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货号：STM-CL-5136 规格：1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管
DU145细胞系（人前列腺癌细胞系）
- 来源：前列腺；前列腺癌大脑转移灶；
- 细胞特征：贴壁细胞 , 上皮细胞样
- 培养基：生长培养基：MEM（含NEAA）＋10% FBS＋1%P/S
- 其他：DU-145细胞对激素不敏感，仅对酸性磷酸酶呈弱阳性
DU-145细胞系是从69岁白人男性患者的前列腺癌大脑转移灶中建立。
DU145细胞是亚三倍体人类细胞系。在30次中期计数中，染色体数目为61和62的发生率最高，高倍体发生率为3%。大多数DU145细胞中发现了t(11q12q)、del(11)(q23)、16q+、del(9)(p11)、del(1)(p32)和其他6条标记染色体，N13染色体通常不存在。Y染色体在DU145细胞中通过易位到一个未识别的染色体片段而异常，X染色体则以单拷贝形式存在。
DU145细胞系特性
DU-145细胞系是从一名69岁白人男性患者的前列腺癌大脑转移灶中分离出来的上皮细胞系。
DU-145细胞系为亚三倍体，模态染色体数为64。
最常见的染色体异常包括61号和62号染色体的高发生率，以及其他标记染色体如t（11q12q）、del（11）（q23）、16q+、del（9）（p11）和del（1）（p32）。
DU-145细胞对激素不敏感，仅对酸性磷酸酶呈弱阳性。
DU-145细胞在软琼脂中可以形成克隆。
DU-145细胞不表达前列腺抗原。
超微结构分析显示细胞具有微绒毛、张力丝、细胞桥粒、线粒体、发达的高尔基体和异质性溶酶体。
DU-145细胞在裸鼠模型中能形成与原发性前列腺癌相似的腺癌（II级）。
DU-145细胞适合作为转染宿主，用于癌症研究、神经科学和3D细胞培养。
抗原表达：O型血；Rh+
同工酶：AK-1，1；ES-D，1；G6PD，B；GLO-I，2；Me-2，1-2；PGM1, 1；PGM3，2
DU145细胞系参数表
| 细胞系名称 | DU145人前列腺癌细胞系 |
| 细胞别称 | DU-145; Du-145; DU145; DU_145; DU.145; DukeUniversity145 |
| 来源 | 前列腺癌患者的大脑转移灶 |
| 患者信息 | 69岁高加索男性 |
| 细胞形态 | 上皮样 |
| 染色体特征 | 低三倍体，模态染色体数64，常见t(11q12q)、del(11)(q23)、16q+、del(9)(p11)、del(1)(p32)等标记染色体，N13染色体缺失，Y染色体异常，X染色体单拷贝 |
| 生长特性 | 贴壁生长 |
| 培养基 | EMEM，含10%胎牛血清(FBS)、2 mM L-谷氨酰胺、2.2 g/L NaHCO3、EBSS |
| 换液频率 | 2-3次/周 |
| 传代比例 | 1:3-1:4 |
| 倍增时间 | 28-51小时 |
| 保存机构 | ATCC，HTB-81，CCTCC，GDC0704 |
| 培养条件 | 气相：空气95%；CO2：5%；温度：37℃ |
| 冻存条件 | 基础培养基+5%DMSO+40%FBS，液氮保存 |
| 生物安全等级 | BSL1 |
| 抗原表达 | O型血，Rh+ |
| 同工酶 | AK-1, 1; ES-D, 1; G6PD, B; GLO-I, 2; Me-2, 1-2; PGM1, 1; PGM3, 2 |
| 雄激素受体 | 表达雄激素受体，但对雄激素配体无反应，属雄激素非依赖性细胞 |
| 酸性磷酸酶 | 弱阳性 |
| 前列腺抗原 | 不表达 |
| 超微结构 | 微绒毛、微丝、细胞桥粒、线粒体、发达的高尔基体、异质溶酶体 |
| 致瘤性 | 在裸鼠中形成II级腺癌 |
| 药物筛选应用 | 用于研究前列腺癌生物学、药物测试和开发 |
培养教程
DU145人前列腺癌细胞系培养步骤
解冻细胞
快速解冻：在37℃水浴中轻柔摇动小瓶，解冻时间约为2分钟。
去除污染：将解冻后的瓶子从水浴中取出，立即用70%乙醇喷洒或浸泡消毒。
离心：将小瓶内容物转移到含9 mL完全培养基的离心管中，以约125 x g离心5至7分钟，弃去上清液。
重悬细胞：用推荐的完全培养基重悬细胞沉淀，并分装到25 cm²培养瓶中。
传代细胞
弃去培养基：去除和丢弃旧培养基。
冲洗细胞层：用0.25%（w/v）胰蛋白酶 - 0.53 mM EDTA溶液短暂冲洗细胞层，以去除血清中的胰蛋白酶抑制剂。
消化细胞：加入2.0到3.0 mL胰蛋白酶-EDTA溶液，观察细胞直至细胞层分散（通常5至15分钟）。
停止消化：加入6.0到8.0 mL完全培养基并轻轻吹打细胞。
转移细胞：将适量的细胞悬液加入新的培养容器中。
培养：在37℃孵育细胞。
相关资料
STR鉴定及相关
| Amelogenin | X,Y |
| CSF1PO | 10,11 |
| D1S1656 | 14,15,16,17.3 |
| D2S441 | 9,13,14 |
| D2S1338 | 16 (ATCC=HTB-81; CCRID; DSMZ=ACC-261) |
| 16,17 (Technion Genomics Center BCF) | |
| D3S1358 | 16 |
| D5S818 | 10,13 |
| D7S820 | 7,10,11 (AddexBio=C0019004/4984; ATCC=HTB-81; CCRID; COG; Cosmic-CLP=905935; DSMZ=ACC-261; Technion Genomics Center BCF; KCLB=30081; PubMed=11304728; PubMed=14518029; PubMed=17254797; PubMed=25877200) |
| 7,10,11,12 (CLS=300168) | |
| D8S1179 | 13,14 |
| D10S1248 | 12,13 |
| D12S391 | 17,18,20,21 |
| D13S317 | 12,13,14 (AddexBio=C0019004/4984; ATCC=HTB-81; CCRID; CLS=300168; COG; DSMZ=ACC-261; Technion Genomics Center BCF; PubMed=11304728; PubMed=14518029; PubMed=25877200) |
| 12,14 (Cosmic-CLP=905935; KCLB=30081; PubMed=17254797; PubMed=19372543; RCB=RCB2143; TKG=TKG 0604) | |
| D16S539 | 11,12,13 (Technion Genomics Center BCF) |
| 11,13 (ATCC=HTB-81; CCRID; CLS=300168; COG; DSMZ=ACC-261; PubMed=25877200) | |
| D18S51 | 11,12 (PubMed=11304728; PubMed=14518029) |
| 12 (ATCC=HTB-81; CCRID; DSMZ=ACC-261; PubMed=17254797; PubMed=19372543; PubMed=25877200) | |
| 12,13 (CLS=300168; Technion Genomics Center BCF) | |
| D19S433 | 13 (ATCC=HTB-81; CCRID; DSMZ=ACC-261) |
| 13,14 (Technion Genomics Center BCF) | |
| D21S11 | 29,30 (PubMed=17254797) |
| 29,30,33 (PubMed=11416159) | |
| 30,32,33,34 (Technion Genomics Center BCF; PubMed=14518029) | |
| 30,33 (CCRID; DSMZ=ACC-261; PubMed=11304728; PubMed=19372543; PubMed=25877200) | |
| 30,33,34 (ATCC=HTB-81; CLS=300168) | |
| D22S1045 | 16 |
| DYS391 | 10 |
| FGA | 21,22,23 (ATCC=HTB-81) |
| 21,22 (DSMZ=ACC-261) | |
| 22 (CCRID; Technion Genomics Center BCF; PubMed=11304728; PubMed=14518029; PubMed=17254797; PubMed=25877200) | |
| 22,23 (CLS=300168) | |
| Penta D | 9,13 |
| Penta E | 12,14 |
| TH01 | 7 |
| TPOX | 11 |
| vWA | 16,17,18 (PubMed=17254797) |
| 17,18 (COG; DSMZ=ACC-261; KCLB=30081; PubMed=11304728; PubMed=14518029; PubMed=19372543; PubMed=25877200; TKG=TKG 0604) | |
| 17,18,19 (AddexBio=C0019004/4984; ATCC=HTB-81; CCRID; CLS=300168; Cosmic-CLP=905935; Technion Genomics Center BCF; PubMed=11416159; RCB=RCB2143) |
参考文献
- 激流式生物反应器培养Marc-145细胞生产猪蓝耳病疫苗工艺研究 《中国畜牧兽医学会动物传染病学分会第四次猪病防控学术研讨会论文集》 2010年
- 摘要：本实验采用激流式生物反应器大规模培养Marc-145细胞,通过控制DO、pH等条件,开发出...
- Marc-145细胞源DCP2基因克隆及其X1亚型蛋白高免血清制备 《基因组学与应用生物学》 2020年07期
- 摘要：...功能及其在病毒复制中的作用机制。本试验拟获取Marc145细胞源DCP2基因序列,构...
- 原花青素和EGCG在Marc-145细胞中对猪繁殖与呼吸综合征病毒的抑制作用研究 《华南农业大学》 2016年
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