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货号：STM-CL-5395 规格：1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管
HCC70细胞（人乳腺导管癌细胞）
- 来源：乳腺导管癌
- 细胞特征：贴壁细胞 ，上皮细胞样
- 培养基：1640+10% FBS+1% P/S
- 其他：HCC70细胞是一种三阴性乳腺癌细胞系,雌激素受体(ER)阴性、孕激素受体(PR)阴性、人表皮生长因子受体2(HER2)阴性
HCC70细胞系是在1992年从一位49岁非洲裔美国女性的原发性浸润性导管乳腺癌中分离。该肿瘤被归类为TNM IIIA期，属于三级浸润性导管癌，伴有17个淋巴结中4个转移的特征。建立HCC70细胞系的过程历时44个月。
HCC70细胞系具有上皮细胞特性。尽管HCC70细胞曾被报道为雌激素受体阳性，但一些最新的研究对这一结果提出了相互矛盾的结论，雌激素受体的确切状态仍在进一步评估中。
HCC70细胞特性特征
HCC70细胞核大、染色质致密、核仁明显
电镜下可见大量游离核糖体、粗面内质网、高尔基复合体和少量线粒体
HCC70是一种三阴性乳腺癌细胞系,即雌激素受体(ER)阴性、孕激素受体(PR)阴性和人表皮生长因子受体2(HER2)阴性
对上皮细胞特异性标记物上皮糖蛋白2（EGP2）和细胞角蛋白19呈阳性
- HCC70细胞表现为多倍体，过表达肿瘤抑制基因p53，但不表达Her2/neu癌基因
HCC70细胞参数表
| 细胞名称 | HCC70细胞（人乳腺导管癌细胞） |
| 细胞别称 | HCC-70; HCC70; HCC0070; HamonCancerCenter70 |
| 细胞来源 | 从一位49岁的非洲裔美国女性的原发性浸润性导管癌中分离 |
| 肿瘤分类 | TNM IIIA期，3级，浸润性导管癌 |
| 细胞形态 | 上皮样，贴壁生长 |
| 细胞特性 | 多倍体，分化不良 |
| 基因特征 | 过表达p53，HER2/neu阴性 |
| 标记物表达 | EGP2（阳性），细胞角蛋白19（阳性） |
| 雌激素受体 | 呈阴性（曾被报道呈阳性） |
| 培养基 | RPMI-1640 + 10% 胎牛血清 |
| 传代方法 | 1:2至1:3传代，每周换液2-3次 |
| 细胞浓度 | 1×10^6 cells/T25培养瓶 |
| 保存条件 | 液氮或-80°C冰箱 |
| 细胞活力 | 高活力，代数低 |
| 细胞鉴定 | STR鉴定和基因突变测序 |
| 冻存条件 | 冻存液：55%基础培养基+40% FBS+5% DMSO 温度：液氮 |
| 培养条件 | 气相：空气，95%；CO2，5% 温度：37℃ |
培养教程
HCC70人乳腺导管癌细胞培养教程
细胞复苏
从液氮罐或-80°C冰箱中取出冻存的HCC70细胞管，迅速放入37°C水浴中，轻轻摇晃，直至HCC70细胞完全复苏。
使用移液管将复苏后的HCC70细胞悬液转移至含有预热RPMI-1640培养基（含10%胎牛血清FBS和1%青霉素-链霉素）的离心管中，混匀。
将HCC70细胞悬液转移至T25培养瓶中，放置于37°C、5% CO₂的培养箱中进行培养。
常规传代
当HCC70细胞达到90%汇合时，吸弃培养基，用PBS洗涤细胞两次。
加入0.25%胰酶-EDTA溶液，在37°C下消化3-5分钟，直至HCC70细胞变成单个圆形。
使用含有血清的培养基终止消化反应，轻轻吹打HCC70细胞以形成单细胞悬液。
根据需要，以1:2至1:4的比例将HCC70细胞接种于新的培养瓶中，并加入适量的预温培养基。
将培养瓶放入37°C、5% CO₂的培养箱中培养，每2-3天更换一次培养基，直到HCC70细胞再次铺满瓶底。
冻存
收集对数生长期的HCC70细胞，离心后弃去上清液。
用冻存液（由50%培养基、40%胎牛血清FBS和10%二甲基亚砜DMSO组成）重悬HCC70细胞，将细胞浓度调整至1-2×10^6 cells/ml。
将HCC70细胞悬液分装至冻存管中，置于-80°C冰箱中过夜。
次日，将冻存管转入液氮罐中保存，以备后续使用。
相关资料
STR鉴定及相关
| Amelogenin | X |
| CSF1PO | 10 (KCLB=9S0070) |
| 10,14 (ATCC=CRL-2315; Cosmic-CLP=907048; Direct_author_submission; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20679594; PubMed=25877200; PubMed=28889351) | |
| D1S1656 | 14 |
| D2S441 | 11 |
| D2S1338 | 23,25 (Technion Genomics Center BCF; PubMed=25877200) |
| 25 (ATCC=CRL-2315; Direct_author_submission) | |
| D3S1358 | 16 (KCLB=9S0070) |
| 16,17 (ATCC=CRL-2315; Direct_author_submission; Technion Genomics Center BCF; PubMed=25877200) | |
| D5S818 | 12,13 (ATCC=CRL-2315; Cosmic-CLP=907048; Direct_author_submission; Technion Genomics Center BCF; KCLB=9S0070; PubMed=20679594; PubMed=28889351) |
| 13 (PubMed=25877200) | |
| D7S820 | 10,11 |
| D8S1179 | 13 |
| D10S1248 | 13 |
| D12S391 | 15,19 |
| D13S317 | 12 |
| D16S539 | 9,13 (ATCC=CRL-2315; Cosmic-CLP=907048; Direct_author_submission; Technion Genomics Center BCF; PubMed=28889351) |
| 13 (PubMed=20679594; PubMed=25877200) | |
| D18S51 | 13,16 |
| D19S433 | 12.2,15.2 |
| D21S11 | 30 |
| D22S1045 | 14 |
| FGA | 19.2,24 (ATCC=CRL-2315; Direct_author_submission; Technion Genomics Center BCF; PubMed=25877200) |
| 24 (KCLB=9S0070) | |
| Penta D | 10 |
| Penta E | 9,16 |
| TH01 | 9 |
| TPOX | 9,10 (Direct_author_submission; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20679594; PubMed=25877200) |
| 10 (ATCC=CRL-2315; Cosmic-CLP=907048; KCLB=9S0070; PubMed=28889351) | |
| vWA | 13,15 |
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