原代大鼠胚肺成纤维细胞

大鼠胚肺成纤维细胞是一类来源于大鼠胚胎早期肺组织的间充质细胞，常从10至13天龄胚胎肺中分离获得，此阶段的肺组织尚处于发育早期，富含未分化的间质细胞，是成纤维细胞分离与培养的理想来源。

大鼠胚肺成纤维细胞形态多呈梭形或星形，细胞体轮廓清晰，核呈卵圆形或椭圆形，核仁明显，细胞质嗜弱碱性，具高度活性。新分离的胚肺成纤维细胞初始呈球形悬浮状态，30分钟后开始贴壁并出现伪足，约6小时完成贴壁转变为典型形态，分布均匀且散在生长，5至7天内可达到融合状态，细胞密集排列，部分交错重叠，胞质透明、胞体较大，细胞间可形成网状连接结构。大鼠胚肺成纤维细胞不仅参与肺组织的发育、重构与再生，还在维持血管稳态、调节凝血与纤溶系统平衡方面具有重要作用，是研究呼吸系统发育、生理调控及疾病机制的关键细胞模型。

大鼠胚肺成纤维细胞特性特征

• 形态：刚分离时呈圆形，折光性良好；贴壁后呈梭形、突起的纺锤形或星形的扁平状结构。

• 细胞核：呈规则的卵圆形，核仁大而明显。

• 生长模式：初期散在生长，后期可呈网状分布，细胞排列紧密，有交叉重叠生长。

• 功能活动：细胞质嗜弱碱性，具有明显的蛋白质合成和分泌活动。
  

• 修复作用：对不同程度的细胞变性、坏死和组织缺损的修复有重要作用。
  

• 转化能力：在一定条件下可以与其他类型的纤维细胞互相转化。
  

• 蛋白质合成：能够合成和分泌多种细胞因子，参与维持血管内外和凝血与纤溶的动态平衡。
  

• 表达特征：通常通过vimentin免疫荧光染色鉴定为阳性，表明其为成纤维细胞的特征
  

大鼠胚肺成纤维细胞参数表

 原代大鼠胚肺成纤维细胞培养教程

relf细胞的复苏操作

• 快速解冻：将冻存的relf细胞从液氮罐中取出，迅速置于37℃水浴中，轻轻摇晃1分钟左右，直至细胞完全解冻。

• 酒精消毒：用75%乙醇擦拭冻存管外壁，以防止relf细胞在操作过程中受到污染。

• 离心处理：将解冻后的relf细胞转移至预热的离心管中，加入5 ml完全培养基（DMEM/F12或MEM，含10% FBS和1%双抗），1000 rpm离心5分钟，弃去上清液。

• 重悬细胞：用2 ml完全培养基轻柔吹打，重悬relf细胞沉淀。

• 细胞接种：将重悬液均匀分装至T25培养瓶，贴好relf细胞信息标签，置入37℃、5% CO₂培养箱中培养。

relf细胞的传代操作

• 贴壁观察：复苏24小时内，relf细胞会逐渐贴壁。观察细胞形态，若发现漂浮细胞或死细胞，应更换新鲜培养基。

• 传代条件：当relf细胞达80%~90%融合度时，可进行传代。

• PBS洗涤：弃去培养基后，用无菌PBS冲洗一次，去除血清残留。

• 胰酶消化：加入1 ml 0.25% Trypsin-EDTA，放入37℃消化1~2分钟，待relf细胞变圆、边缘收缩即可终止。

• 终止与收集：加入1 ml完全培养基终止胰酶反应，轻轻吹打细胞并收集至离心管。

• 离心重悬：1000 rpm离心5分钟后弃去上清，用完全培养基重悬relf细胞。按1:2或1:3比例进行分瓶培养。

• 继续培养：重新置入CO₂培养箱中继续培养，确保relf细胞增殖稳定。

relf细胞的冻存流程

• 细胞收集：传代至细胞重悬阶段后，取部分relf细胞计数，调整至1×10⁶ cells/ml。

• 制备冻存液：使用90%完全培养基与10% DMSO混合制成冷冻保护液，用于重悬relf细胞。

• 分装冻存：将relf细胞悬液分装入1.2 ml冻存管中，并标注细胞名称、冻存日期与传代次数。

• 程序降温：将冻存管置于程序降温盒中，置于-80℃冰箱中过夜缓慢降温。

• 液氮保存：24小时后将冻存的relf细胞转移至液氮罐中长期保存。

relf细胞培养注意事项

• relf细胞应在无菌条件下操作，防止支原体及其他微生物污染。

• 胰酶消化应掌握适当时间，避免细胞损伤影响后续贴壁与增殖。

• 冻存液应现配现用，DMSO应为无菌级并经低温保存，防止毒性积累影响relf细胞活力。

• 实验周期内应定期显微镜下检查relf细胞形态，监测污染和生长状态。