
HuH-7细胞系(人肝癌细胞)
- 来源:HUH-7人肝癌细胞是一种源自日本男性高分化肝细胞癌的细胞系,最初于1982年从该患者的肝脏肿瘤中分离得到
- 细胞特征:上皮细胞样;贴壁生长
- 培养基:DMEM,10%胎牛血清,1%抗生素;空气95%,二氧化碳5%;37℃培养
- 其他:产甲胎蛋白,胰酶α抗体,血浆铜蓝蛋白,纤维蛋白原,纤维粘连蛋白等
HUH-7人肝癌细胞系源自日本一名男性的高分化肝细胞癌,主要由上皮样和致瘤细胞组成,具有永生性。HUH-7细胞系呈现高度异质性,染色体数目在55至63之间,能够附着在培养皿或培养瓶表面,用于多个研究领域。
HUH-7细胞能够产生多种生物分子,包括甲胎蛋白、胰酶α抗体、血浆铜蓝蛋白、纤维蛋白原和纤连蛋白等。这些特点使得HUH-7细胞在基因编辑敲除研究,特别是在涉及这些生物分子的研究中非常有用。
HUH-7细胞适用于研究在丙型肝炎和登革热病毒等领域。特别是在丙型肝炎基因敲除研究中,通过使用CRISPR/Cas9技术,可以编辑HUH-7细胞,进而开展与丙型肝炎病毒相关的研究。HUH-7细胞系能够有效复制HCV,是目前唯一能够实现这一点的细胞系及其衍生细胞株。HUH-7细胞常被用作研究HCV的模型,用于筛选抗丙型肝炎病毒的候选药物,并开发新药。
HUH-7细胞还用于建立异种移植模型(CDX)小鼠模型,用于研究肿瘤生长抑制。在药物研究方面,HUH-7细胞用于研究肝癌药物的药效、代谢,并深入探讨药物的分子机制。
截至2022年2月的研究报告称,Huh7细胞能够将BNT162b2疫苗的信使RNA至少部分逆转录为DNA。需要注意的是,这项研究并未证明DNA整合的发生。这一发现突显了HUH-7细胞在疫苗研究和相关领域的多功能性。
HuH-7人肝癌细胞产品参数表
产品简称 | HUH-7 |
中文名称 | 人肝癌细胞 |
别称 | HuH-7; HUH-7; HuH7; Huh7; HUH7; JTC-39; Japanese Tissue Culture-39 |
细胞数量 | 1*10^6 |
组织来源 | 人,57岁,男性,肝脏,肝癌,肿瘤细胞 |
形态特征 | 上皮细胞样 |
生长方式 | 贴壁生长 |
特点介绍 | 可产甲胎蛋白,胰酶α抗体,血浆铜蓝蛋白,纤维蛋白原,纤维粘连蛋白等 |
培养条件 | DMEM,10%胎牛血清,1%抗生素;空气95%,二氧化碳5%;37℃培养 |
换液频率 | 2-3天 |
安全性 | BSL-1 |
STR鉴定 | 正确 |
生长培养基 | DMEM+10% FBS+1% P/S |
冻存条件 | 冻存液:55% 基础培养基+40%FBS+5%DMSO 温度:液氮 |
培养条件 | 气相:空气,95%;CO2,5% 温度:37℃ |
推荐传代比例 | 1:2-1:4 |
推荐换液频率 | 2~3次/周 |
保藏机构 | CCLV; CCLV-RIE 1079 JCRB; JCRB0403 KCB; KCB 200970YJ KCLB; 60104 |
HuH-7人肝癌细胞生长速率图
培养教程
1. 培养基准备:
使用DMEM培养基,添加10% FBS。
加入1% P/S,完成DMEM + 10% FBS + 1% P/S完全培养基。
2. 培养条件:
空气气相:95%;CO2气相:5%。
培养温度保持温度在37摄氏度。
3. 细胞复苏:
冻存管中的HUH-7细胞在37℃水浴中迅速解冻,加入4-9mL培养基,离心4-6分钟。
弃去上清液,加入完全培养基后吹匀。
过夜培养。
4. 细胞传代:
细胞密度达到80%-90%时进行传代。
用PBS润洗细胞,加入2ml消化液,37℃培养箱中消化1-2分钟。
补加培养基终止消化,离心重悬后分到新皿中。
5. 细胞冻存:
细胞生长良好时冻存,PBS润洗后加入胰酶(含EDTA),加入含血清的培养基终止消化,离心后以冻存液重悬,冻存管冻存。
注意事项:
保持培养器具无菌。
定期检查培养箱温度和CO2浓度。
严格遵循实验室规程进行培养液配制和更换。
确保实验前所有仪器设备正常运行。
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STR鉴定及相关
HuH-7人肝癌细胞STR 点位信息
Markers: | |
Amelogenin | X |
CSF1PO | 11 |
D1S1656 | 16 |
D2S441 | 12,14 |
D2S1338 | 19 |
D3S1358 | 15 |
D5S818 | 12 |
D6S1043 | 13,15 |
D7S820 | 11 |
D8S1179 | 14,15 |
D10S1248 | 16 |
D12S391 | 20 (CLS; Genomics_Center_BCF_Technion) |
20,21 (CCRID) | |
D13S317 | 10 (CLS; Genomics_Center_BCF_Technion; RCB) |
10,11 (CCRID; Cosmic-CLP; JCRB; KCLB; PubMed=25877200; PubMed=29774518; PubMed=31378681; TKG) | |
D16S539 | 10 |
D18S51 | 15 |
D19S433 | 13,14 |
D21S11 | 30 |
D22S1045 | 17,20 |
FGA | 22,23 |
Penta D | 12 |
Penta E | 11 |
TH01 | 7 |
TPOX | 8,11 |
vWA | 16,18 (CCRID; Cosmic-CLP; JCRB; KCLB; PubMed=25877200; PubMed=29774518; PubMed=31378681; RCB; TKG) |
18 (CLS; Genomics_Center_BCF_Technion) |
参考文献
- Huh-7肝癌干细胞培养的方法学建立及雷公藤红素抑制Huh-7肝癌干细胞的作用机制 《安徽中医药大学》 2017年
- 摘要:目的建立Huh7肝癌干细胞的培养体系并研究雷公藤红素抑制Huh7肝癌干细胞的作用机制。方法...
- 基于NF-κB通路探讨不同浓度IL-33对人肝癌Huh-7细胞的侵袭、凋亡影响 《右江民族医学院》 2021年
- 摘要:...不同浓度白细胞介素-33(Interleukin-33,IL-33)影响后对人肝癌H...
- Mithramycin A对肝癌细胞Huh-7增殖的影响 同济大学学报(医学版) > 2009年5期
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- 新补骨脂异黄酮通过caspase-3/GSDME通路诱导肝细胞癌Huh-7细胞焦亡 中国肿瘤生物治疗杂志 > 2023年4期
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