
HGC27胃癌细胞(人未分化胃癌细胞)
- 来源:胃,淋巴结转移
- 细胞特征:贴壁细胞,上皮细胞样
- 培养基:RPMI-1640+10% FBS+1% P/S
- 其他:HGC-27细胞能够分泌粘液素;P53基因呈阴性
HGC27细胞系来源于一位未分化胃癌患者的淋巴结转移组织,HGC27胃癌细胞系能够分泌粘液素,体现了胃癌的病理特征。HGC-27细胞表现出上皮样形态,适合贴壁生长。
HGC27胃癌细胞特性特征
分泌特性: HGC27细胞能够分泌粘液素,这一特性与其来源于胃癌的特征密切相关。
致瘤性: 在裸鼠体内,HGC27细胞具有致瘤性。
P53状态: HGC27细胞系的P53基因呈阴性。
HGC27胃癌细胞参数表
细胞名称 | HGC27胃癌细胞(人未分化胃癌细胞) |
别名 | HGC-27; HGC 27 |
种属来源 | 人 |
组织来源 | 胃,淋巴结转移 |
疾病特征 | 胃癌,未分化 |
细胞形态 | 上皮细胞样 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞数量 | >1x10^6 细胞数/支 |
包装形式 | T25培养瓶或1mL冻存管 |
培养基 | RPMI-1640+10% FBS+1% P/S |
培养环境 | 95%空气+5% CO2;37°C |
传代比例 | 1:3-1:6 |
传代周期 | 48-72小时 |
检测结果 | 细菌、真菌、支原体、HIV、乙肝、丙肝均为阴性 |
致瘤性 | 裸鼠体内具有致瘤性 |
P53表达 | 呈阴性 |
运输方式 | 干冰运输或常温运输 |
保存条件 | 液氮存储或-80°C冰箱保存 |
安全性 | 视为有潜在的生物危害性,需在二级生物安全台内操作 |
培养教程
HGC27人未分化胃癌细胞培养教程
细胞复苏
复苏24小时后,观察HGC27细胞的贴壁情况。如果细胞贴壁良好,吸弃旧培养基,换上新鲜的预热完全培养基,继续培养。
将冻存管从液氮中取出,迅速置于37℃水浴中解冻(约1分钟),确保HGC27细胞不受热损伤。
解冻后,将HGC27细胞悬液迅速加入5-6 mL预热的完全培养基中,并轻轻混合。
以1000 rpm离心5分钟,弃去上清液后,将HGC27细胞轻轻重悬于2 mL完全培养基中。
将HGC27细胞悬液转移至T25培养瓶中,并放入37℃、5% CO2培养箱中培养。
HGC27细胞传代
传代时机: 当HGC27细胞生长至80%-90%汇合度时进行传代,以保持细胞的健康状态。
吸弃旧培养基后,用1 mL无菌PBS清洗一次,去除残留的培养基和血清。
加入1 mL 0.25%胰酶,置于37℃培养箱中消化1-2分钟,直到HGC27细胞皱缩变圆。
加入2 mL完全培养基终止消化,轻轻吹打混匀HGC27细胞悬液。
以1000 rpm离心5分钟,弃去上清液后,将HGC27细胞重悬于新培养基中。
将HGC27细胞悬液分配至新的培养瓶中,标记后放入37℃、5% CO2培养箱中培养。
HGC27细胞冻存
冻存液配制: 使用90%胎牛血清和10% DMSO混合配制HGC27细胞冻存液(现用现配)。
将HGC27细胞悬液分装至冻存管中,清楚标记。
将HGC27细胞冻存管置于-80℃冰箱中过夜,之后转移至液氮中长期保存。
注意事项
换液周期: 每2-3天更换HGC27细胞的培养基,以保持培养环境的适宜状态。
细胞状态观察: 定期显微镜检查HGC27细胞的形态和生长情况,确保细胞健康。
操作安全性: 在二级生物安全柜中进行操作,以避免外界污染。
HGC27细胞死亡的判断方法
细胞形态观察
显微镜检查: 在显微镜下观察HGC27细胞形态。如果HGC27细胞皱缩、变圆、脱落,或缺乏贴壁生长,可能意味着HGC27细胞已经死亡。
贴壁情况: 正常情况下,HGC27细胞应平铺贴壁生长。如果大部分HGC27细胞未能贴壁或漂浮在培养基中,可能表明细胞已经死亡。
细胞计数
细胞计数法: 使用细胞计数板或自动细胞计数仪对HGC27细胞进行计数。如果HGC27细胞数量显著减少,且与预期生长曲线不符,可能意味着HGC27细胞已死亡。
细胞活性检测
台盼蓝染色: 活细胞不会被台盼蓝染色,而死HGC27细胞则会呈现蓝色染色,通过这种方法可以直观地判断HGC27细胞的存活状态。
MTT法: 通过MTT或其他检测方法评估HGC27细胞的代谢活性。如果代谢活性明显降低,可能意味着HGC27细胞已经死亡。
培养基观察
培养基浑浊度: 如果培养基变得异常浑浊,可能是由于HGC27细胞死亡或细菌污染引起的。
pH变化: 检查HGC27细胞培养基的pH值变化,死亡细胞可能导致培养基酸碱度发生异常。
其他指标
细胞凋亡标志物: 可通过流式细胞术检测HGC27细胞凋亡相关标志物,如Annexin V和PI染色,进一步确认HGC27细胞的存活状态。
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参考文献
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