SNU-5细胞（人胃癌细胞） （暂不提供）

SNU-5细胞系来源于一名33岁的亚洲女性患者，该患者被诊断为低分化胃癌，于1987年从患者的腹水样本中分离建立。患者在接受化疗治疗后，包括使用了5-氟尿嘧啶、阿霉素以及丝裂霉素C等药物，细胞仍表现出较强的生长能力。SNU-5细胞具备典型的亚四倍体染色体数，其模态染色体范围在87到88之间，并且在大多数细胞中检测到了18条以上的标记染色体。常见的异常染色体包括1号、7号、6号等多个结构重排标记，是研究胃癌的分子机制提供了重要模型。

SNU-5细胞特性特征

• 癌症基因：表达c-myc和erb-B2基因，但不表达N-myc、L-myc和EGF受体基因。
  

• 抗原表达：SNU-5细胞表面表达癌胚抗原（CEA）和肿瘤相关抗原TAG-72。抗原表达：O型血；Rh+

• 酶活性：SNU-5细胞对左旋多巴脱羧酶（DDC）呈阳性反应，但胃泌素受体呈阴性。

• 表达标记：乙酰胆碱，毒蕈碱，表达；血管活性肠肽（VIP），表达；血管活性肠肽；毒蕈碱乙酰胆碱
  

• 致瘤性：SNU-5细胞在半固体培养基中的集落形成效率为27%，显示出其致瘤潜力。
  

• 转移特性：SNU-5细胞具备较强的转移能力，常用于无胸腺裸鼠模型中进行腹膜腔转移的研究。

• SNU-5细胞广泛应用于胃癌的基础研究、药物筛选以及病理机制研究，尤其是在探索新型抗癌药物及其作用机制方面
  

SNU-5细胞参数表

SNU-5人胃癌细胞培养教程

收到SNU-5细胞后的初步处理

• 检查SNU5细胞状态：收到SNU5细胞后，首先检查细胞运输瓶的外观是否完好，确保没有破损、漏液或污染。如果培养液出现浑浊或其他异常现象，应立即联系供应商。

• 显微镜观察：使用显微镜观察SNU5细胞生长状态。打开运输瓶的封口膜后，将T25培养瓶放置在37℃培养箱中静置2-3小时，使SNU5细胞逐步适应环境。

SNU5细胞复苏

• 解冻SNU5细胞：将冻存管从液氮中取出，立即置于37℃水浴中快速解冻，解冻过程中轻轻摇动冻存管，确保SNU5细胞均匀解冻。此过程应尽可能快，以防细胞受损。

• 离心：将解冻后的1 mL SNU5细胞悬液转移至含有4 mL预热的培养基的离心管中，在1000 RPM下离心4分钟，去除上清液。

• SNU5细胞重悬：弃去上清后，加入1-2 mL新鲜的培养基并轻轻吹打，使SNU5细胞均匀分布。

• 培养SNU5细胞：将细胞悬液转移到预先铺有8 mL培养基的T25培养瓶或10 cm培养皿中，静置过夜以便SNU5细胞适应并贴壁。

SNU5细胞传代

• 传代条件：当SNU5细胞生长密度达到80%-90%时应进行传代，以避免细胞过度密集影响生长。

• 细胞洗涤：弃去培养基，用不含钙镁的PBS洗涤SNU5细胞1-2次，去除代谢废物和残留培养液。

• 细胞消化：加入1 mL 0.25%胰酶-EDTA消化液，置于37℃培养箱中消化1-2分钟，观察SNU5细胞是否开始变圆并逐渐脱离瓶壁。

• 终止消化：当SNU5细胞大部分脱落后，加入适量培养基终止消化，轻轻敲打瓶壁确保细胞完全脱离。

• 离心与重悬：将SNU5细胞悬液离心，1000 RPM下离心4分钟，弃去上清液后重新悬浮在1-2 mL培养基中。

• SNU5细胞分配：将重悬的SNU5细胞按照1:2的比例转移至新的培养瓶或培养皿中，加入8 mL培养基，继续培养。

SNU5细胞冻存

• SNU5细胞收集与计数：SNU5细胞达到合适的密度时，弃去培养基，用PBS清洗细胞一次，加入胰酶消化SNU5细胞，待细胞变圆脱落后加入培养基终止消化。

• 离心：在1000 RPM下离心4分钟，弃去上清液。

• SNU5细胞重悬与冻存液准备：将SNU5细胞重新悬浮于含10% DMSO和90%胎牛血清的冻存液中，确保每支冻存管中SNU5细胞密度至少为1 x 10^6/mL，每支冻存管分装1 mL细胞悬液，标注好相关信息。

• 冷冻步骤：将SNU5细胞冻存管放入程序降温盒中，置于-80℃冰箱2小时后，再转入液氮罐中长期保存。