PC-12大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞(低分化)

PC-12(低分化)大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞是一种常用的细胞系，它来源于能够移植的雄性大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤。这些细胞具有表达神经生长因子（NGF）受体的特性，NGF能够诱导这些细胞产生神经表型。与此同时，这些细胞不合成肾上腺素，这一特性使其成为研究神经生物学、神经发育和神经药理学的重要模型细胞之一。

PC-12(低分化)细胞系最初来自于雄性大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤。这些细胞在体外培养条件下保持了其在体内来源组织的特性，表现出多角形的形态，并且倾向于贴壁生长。此外，PC-12(低分化)细胞表达NGF受体，这使得它们对NGF的反应性增强，并且在受到NGF刺激时，能够表现出神经细胞的特征，如突起的形成和神经元的生长。

PC-12(低分化)细胞适应康宁CellBIND®培养皿，以改善细胞附着。该细胞系经过支原体、真菌、酵母、细菌、HIV-1、HBV、HCV检测。保证良好的生存能力。

PC-12大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞参数表

PC-12(Low differentiation)大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞(低分化)应用

• 神经生物学研究：PC-12（低分化）细胞被广泛应用于神经生物学领域，用于研究神经细胞的生长、分化、突触形成等过程。由于其对NGF的响应，这些细胞能够在诱导下形成神经样细胞，并模拟神经细胞的行为。

• 药物筛选：PC-12（低分化）细胞也被用作药物筛选的模型细胞系。通过观察药物对这些细胞的影响，可以评估药物对神经系统的影响，从而寻找潜在的神经保护剂或神经毒性物质。

• 神经退行性疾病研究：由于PC-12（低分化）细胞对NGF的依赖性以及其神经细胞样的特性，这些细胞也被用于研究神经退行性疾病，如阿尔茨海默病和帕金森病等。

PC-12（低分化）细胞是来自雄性大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤的细胞系，常用于神经生物学研究和药物筛选。下面是关于PC-12（低分化）细胞的培养教程：

1. 培养基准备

• 使用RPMI-1640培养基，添加10% FBS（胎牛血清）和1% P/S（青霉素/链霉素）。

• 培养基应事先预温至37°C。

2. 细胞解冻

• 从液氮罐中取出冻存管，快速解冻至37°C的水浴中，到细胞即将完全解冻，剩余小冰晶时停止。

• 将细胞转移到预先准备好的细胞培养基中，离心弃上清，新培养基重悬。

• 轻轻振荡或轻轻摇动培养瓶，使细胞均匀分散。

3. 细胞传代

• 当PC-12细胞生长至80-90% 的密度时，即可进行传代。一般建议传代比例为1:3-1:4。

• 用PBS（磷酸盐缓冲盐水）洗涤细胞一次，以去除培养基中的残留物。

• 用0.25%的胰酶-EDTA溶液进行细胞解离，通常需要约2-5分钟。

• 加入等体积的新培养基停止胰酶的作用，离心后新培养基重悬。

• 将细胞悬浮液转移到新的培养瓶中，加入预热的培养基。

4. 培养条件

• 在37°C、5% CO2的恒温培养箱中培养。

• 每2-3天更换培养基，保持细胞处于最佳生长状态。

5. 冻存细胞

• 在PC-12细胞生长状态良好时，使用冻存液（55%基础培养基+40% FBS+5% DMSO）将细胞冻存。

• 将细胞悬浮液均匀地加入冻存管中，避免气泡。

• 缓动原则梯度降温，长期储存放入液氮罐中保存。

6. 注意事项

• 定期检查细胞培养的形态和生长状态，确保PC-12细胞处于健康状态。

• 严格遵守无菌操作规程，避免细胞受到污染。

• 避免细胞过度增长和过度传代，以免影响细胞的生物学特性。