原代小鼠颅骨成骨细胞

原代小鼠颅骨成骨细胞（C57BL/6 OB cells）是研究骨生物学的重要模型，通常来源于C57BL/6或ICR品系乳鼠的颅盖骨。

成骨细胞在体外培养中呈现多角形或梭形形态，通过细胞突起相互连接形成网络，具备分泌骨基质（如Ⅰ型胶原和非胶原蛋白）并诱导矿化形成矿化结节的能力，同时表达碱性磷酸酶（ALP）、骨钙素（OCN）、RUNX2等成骨标志物。原代成骨细胞在基础研究、药物筛选、生物材料开发及组织工程等领域具有重要价值，广泛用于探索骨形成和重建机制，研究骨质疏松等疾病的细胞和分子基础，评估骨再生相关药物及生物材料的效果，是骨科学研究中不可或缺的实验工具。

原代小鼠颅骨成骨细胞特性特征

• 原代小鼠颅骨成骨细胞在体外培养时呈现多角形或梭形，细胞间长突起互相接触，形成网络状结构。这种形态有助于细胞间的相互作用和信号传递。

• 小鼠颅骨成骨细胞表达多种成骨相关的生物标志物，如：碱性磷酸酶（ALP）、RUNX2、骨钙素（OCN）。

• 矿化能力：在适当诱导下，小鼠颅骨成骨细胞能够形成矿化结节，显示出其成骨潜能。通过茜素红S染色可以观察到红色颗粒状或块状钙结节的形成，这表明细胞具备合成和矿化骨基质的能力。

• 增殖与分化能力：原代小鼠颅骨成骨细胞在培养中能够持续增殖，并在适宜条件下分化为成熟的成骨细胞。

• 小鼠颅骨成骨细胞在不同阶段表达不同的基因：初期阶段主要表达ALP、COL1A1（Ⅰ型胶原）等基因；随着分化进程，RUNX2和OCN等基因的表达逐渐增加。

• 研究还发现，与成骨相关的信号通路（如Wnt/β-catenin、TGF-β等）在这些细胞中也被激活，促进其分化和功能。

• 成骨细胞通过多种信号通路调控其功能，包括：Wnt/β-catenin信号通路、RANK/RANKL/OPG通路。

• 成骨细胞能够分泌外泌体，这些外泌体含有多种生物活性分子，如miRNA、蛋白质等，参与调节破骨细胞的分化及其他细胞间的相互作用
  

原代小鼠颅骨成骨细胞参数表

原代小鼠颅骨成骨细胞培养教程

小鼠颅骨成骨细胞的复苏

• 快速解冻：将冻存管从液氮中取出，立即放入37℃水浴中，迅速摇动，直至细胞悬液完全融化（约1-2分钟）。

• 小心打开冻存管，将内容物转移至离心管，加入10 mL预热的完全培养基。
  

• 1000 rpm离心5分钟，去除上清液以清除DMSO残留。

• 用新鲜完全培养基重悬细胞沉淀，将细胞转移至培养瓶中，置于37℃、5% CO₂培养箱中培养。
  

• 复苏后24小时内更换新鲜培养基以清除死细胞和代谢废物，随后常规培养。

小鼠颅骨成骨细胞的冻存

• 将培养至对数生长期的小鼠颅骨成骨细胞用0.25%胰蛋白酶消化，收集细胞悬液。

• 1000 rpm离心5分钟，弃去上清液，用PBS清洗后再次离心。

• 制备冻存液：按细胞浓度1×10⁶至1×10⁷个/mL，用冻存液重悬细胞沉淀。

• 分装：将细胞悬液分装至冻存管中，每管1 mL，盖紧冻存管。

• 逐步降温：将冻存管放入冷冻盒中，置于-80℃保存24小时后转移至液氮罐长期保存。

小鼠颅骨成骨细胞的传代

• 观察细胞状态：当小鼠颅骨成骨细胞贴壁生长并达到80%-90%融合时，准备传代操作。

• 弃去培养基，用PBS轻轻冲洗细胞一遍以去除残留物质。
  

• 加入适量胰蛋白酶，覆盖细胞层后置于37℃孵育30-45秒，观察细胞变圆并开始脱附。

• 轻拍培养瓶侧壁帮助细胞完全脱附。

• 加入2倍体积预热的完全培养基终止消化，并将细胞悬液转移至离心管。
  

• 1000 rpm离心5分钟，弃去上清液，用新鲜培养基重悬细胞沉淀。
  

• 按1:2或1:3的比例，将细胞接种至新的培养瓶中，加入适量培养基，继续培养。

注意事项

• 复苏阶段：尽量缩短细胞暴露在DMSO环境中的时间，避免对细胞造成毒性影响。

• 冻存阶段：确保降温过程缓慢均匀（约1℃/分钟），以减少细胞损伤。

• 传代阶段：控制胰蛋白酶的消化时间，避免过度消化导致细胞活性下降。

• 无菌操作：整个实验过程中严格无菌，防止污染影响细胞状态。