OCI-LY7细胞（人弥漫大B细胞淋巴瘤细胞）

OCI-LY7细胞系源自1984年一名48岁男性患者的外周血样本，被诊断为B细胞非霍奇金淋巴瘤（B-NHL），为2A期复发的弥漫性大B细胞淋巴瘤（DLBCL）。OCI-LY7细胞系是通过分离和纯化患者血液中的淋巴细胞获得，具有淋巴母细胞样的形态学特征。文献报道，该细胞系为EBV阴性，并携带涉及MYC-IGH基因重排的t(8;14)易位，同时伴有TP53基因的点突变。

OCI-LY7细胞系因其遗传特性和稳定的生长能力，广泛应用于基础研究及临床前药物测试。其携带的t(8;14)染色体易位导致了MYC-IGH基因的异常表达，这对于淋巴瘤的发生发展具有重要意义。此外，TP53基因的突变进一步影响了细胞的增殖与存活，使其成为研究淋巴瘤发病机制及评估治疗策略的理想模型。

OCI-LY7细胞特性特征

• EB病毒状态：OCI-LY7细胞为EBV阴性，这意味着其生长不依赖于EB病毒的感染。
  

• OCI-LY7细胞在不同实验中显示出对多种药物（如干扰素和沙利度胺）的敏感性。

• OCI-LY7细胞在接受药物处理后，能够调节凋亡相关蛋白的表达，例如上调Bax和caspase-3，同时下调Bcl-2的表达，这些变化与细胞凋亡过程密切相关。

• OCI-LY7细胞的外显子组和RNA序列数据已被记录并可用，这为进一步的基因组学和转录组学研究提供了基础。
  

• OCI-LY7细胞系在分子生物学研究中被广泛应用，特别是在探索淋巴瘤相关基因表达及其调控机制方面

OCI-LY7细胞参数表

OCI-LY7人弥漫大B细胞淋巴瘤细胞培养教程

OCI-LY7细胞培养步骤

• 在无菌条件下，将IMDM基础培养基与10%-20%的胎牛血清混合。
  

• 添加青霉素（100 U/ml）和链霉素（100 µg/ml）以预防细菌污染。

• 确保培养基pH值在7.2-7.4范围内，并过滤除菌保存，以备OCI-LY7细胞培养使用。

OCI-LY7细胞的复苏与接种

• 从液氮中取出冻存的OCI-LY7细胞，迅速放入37°C水浴中解冻，注意甩干管壁以避免污染。

• 解冻后立即将OCI-LY7细胞悬液转移至含有10 ml新鲜培养基的无菌离心管中。

• 以1000 rpm离心5分钟，去除上清液，将OCI-LY7细胞重悬于5 ml新鲜培养基中。

• 将重悬后的细胞转移至T25或T75培养瓶，并将培养瓶置于37°C、5% CO₂培养箱中培养。

细胞培养与维护

• 每36至48小时使用显微镜观察OCI-LY7细胞生长情况，确认细胞状态正常。

• OCI-LY7细胞为悬浮生长，传代时轻轻吹打混匀细胞，避免细胞团块形成。

• 当OCI-LY7细胞密度达到80%以上时，建议进行传代。将细胞悬液转移至离心管，1000 rpm离心5分钟，去除上清液后用新鲜培养基重悬OCI-LY7细胞。

• 重悬后的OCI-LY7细胞按照适当比例（通常为1:2至1:5）分配到新的培养瓶中，并补充新鲜培养基。

OCI-LY7细胞传代

• OCI-LY7细胞应每2至3天进行传代，具体根据细胞生长速度和密度进行调整。

• 传代时务必保持无菌操作，避免细胞受到污染。

• 传代后将OCI-LY7细胞重新置入CO₂培养箱中继续培养。

OCI-LY7细胞冻存

• 当OCI-LY7细胞处于对数生长期且状态良好时，选择进行细胞冻存。

• 将OCI-LY7细胞离心后重悬于冻存液中（90% FBS和10% DMSO），分装入冻存管。

• 将冻存管逐步降温至-80°C保存，随后可长期保存于液氮罐中。

注意事项

• 无菌操作：所有操作必须在无菌环境下进行，以避免OCI-LY7细胞污染。

• 细胞健康状态：定期检查OCI-LY7细胞形态，确保细胞处于健康状态。如果出现异常，如细胞生长减慢或污染，应立即采取相应措施。

• 传代频率：为保持OCI-LY7细胞活力，建议在细胞密度达到80%时传代，避免过度拥挤影响细胞健康。

• 冻存注意：冻存过程需缓慢降温，以确保OCI-LY7细胞的高存活率。