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货号：STM-CL-6035 规格：1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管
NIH/3T3细胞（小鼠胚胎细胞）
- 来源：胚胎
- 细胞特征：贴壁细胞 ，成纤维细胞样
- 培养基：生长培养基：DMEM＋10% NCS＋1% P/S
- 其他：NIH/3T3细胞是多克隆群体，存在可辨别的克隆畸变，但易于细胞转化。
NIH/3T3细胞是从小鼠NIH/Swiss胚胎中分离的成纤维细胞系，对肉瘤病毒和白血病病毒敏感，特别适用于DNA转染研究。
NIH/3T3细胞是多克隆群体，存在可辨别的克隆畸变，但易于细胞转化。
经过多次亚克隆，NIH/3T3细胞确立为适合转化分析的亚株，保持了对转化实验的高度敏感性和可靠性。
NIH/3T3细胞源自NIH Swiss小鼠胚胎培养物，经过五轮以上亚克隆，确保了其形态学特征更适合转化分析。
经检测，NIH/3T3细胞对鼠痘病毒呈阴性。
NIH/3T3小鼠胚胎细胞产品参数表
| 细胞名称 | NIH/3T3小鼠胚胎细胞 |
| 别称 | NIH-3T3; NIH3T3; 3T3; 3T3NIH; 3T3-Swiss; Swiss-3T3; Swiss/3T3; Swiss 3T3; Swiss3T3; nih3t3 |
| 来源 | 小鼠NIH/Swiss胚胎 |
| 细胞形态 | 成纤维细胞样 |
| 生长特性 | 贴壁生长 |
| 多克隆性 | 是 |
| 克隆畸变 | 存在可辨别的克隆畸变 |
| 转化性 | 易于细胞转化 |
| 亚株特性 | 形态学特征适合于转化分析 |
| 建立过程 | 来源于NIH Swiss小鼠胚胎培养物，经过五轮以上亚克隆 |
| 鼠痘病毒 | 阴性 |
| 应用领域 | 肿瘤病毒和白血病病毒研究、DNA转染研究、转化分析等 |
| 生物安全等级 | BSL1 |
| 倍增时间 | ~20小时 |
| 传代比例 | 1:2-1:3 |
| 细胞消化 | 1-3分钟 |
| 完全培养基 | DMEM培养基；10% NCS；1%双抗 |
| 冻存液 | 40%FBS，DMSO 5%，或非程序冻存液 |
| 包装规格 | T25瓶或者1mL冻存管包装 |
| 温度 | 37摄氏度，培养箱湿度为70%-80% |
| 培养环境 | 空气，95%；二氧化碳，5% |
| 冻存条件 | 基础培养基+5%DMSO +40%FBS，液氮保存 |
| 保藏机构 | ATCC; HTB-33; CRL-1658; DSMZ; ACC-59; CCTCC; GDC0030 |
NIH/3T3细胞的典型应用模型
病毒感染模型：
肉瘤病毒感染模型：NIH/3T3细胞可用于建立肉瘤病毒感染模型，研究肉瘤病毒的感染机制、病毒复制周期以及肿瘤形成机制等。
白血病病毒感染模型：利用NIH/3T3细胞可以构建白血病病毒感染模型，探究白血病病毒与宿主细胞的相互作用、病毒复制与传播等相关机制。
DNA转染研究模型：
基因转染模型：NIH/3T3细胞可作为基因转染研究的模型细胞，用于向细胞内导入外源性DNA，探究基因的功能和调控机制，以及基因在细胞内的表达和影响。
转化实验模型：NIH/3T3细胞系常被用于进行转化实验，研究肿瘤相关基因的功能、致癌机制以及肿瘤细胞的增殖和转移等过程，有助于揭示肿瘤发生发展的分子机制。
培养教程
复苏NIH/3T3细胞
在37℃水浴中快速摇晃解冻含有1mL NIH/3T3细胞悬液的冻存管。
将解冻的NIH/3T3细胞悬液加入8-10mL培养基中，并混合均匀。
在1000RPM条件下离心5分钟，弃去上清液，补加1-2mL培养基后吹匀。
将所有NIH/3T3细胞悬液加入培养瓶中，进行过夜培养。
NIH/3T3细胞传代
当NIH/3T3细胞密度达到80%-90%时，即可进行传代培养。
弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗NIH/3T3细胞1-2次。
加入1mL消化液（0.25%Trypsin-0.53mM EDTA）于培养瓶中，37℃培养箱中消化1-2分钟。
在显微镜下观察NIH/3T3细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，则迅速终止消化并补加培养基。
补加培养基后，轻轻打匀后吸出，在1000RPM条件下离心5分钟，弃去上清液，补加培养液后吹匀。
将NIH/3T3细胞悬液按1：2比例分到新的含8mL培养基的新皿中或者瓶中。
NIH/3T3细胞冻存
当NIH/3T3细胞生长状态良好时，可进行细胞冻存。
弃去培养基后，用PBS清洗NIH/3T3细胞一遍后加入1mL胰酶。
NIH/3T3细胞变圆脱落后，加入4mL含血清的培养基终止消化。
使用血球计数板计数后，进行离心去除上清液。
加入血清重悬NIH/3T3细胞，根据细胞数量加入血清和DMSO，DMSO终浓度为5%，每支冻存管冻存1mL细胞悬液。
将冻存管置于程序降温盒中，放入-80度冰箱4个小时以上转入液氮灌储存。
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STR鉴定及相关
STR点位信息
| 18-3 | 17,19 |
| 6-7 | 12 |
| 5-5 | 14,15 |
| X-1 | 25 |
| 1-2 | 13,17 |
| 7-1 | 29 |
| 8-1 | 15 |
| 1-1 | 10 |
| 19-2 | 11,12 |
| 15-3 | 20.3 |
| 12-1 | 20 |
| 6-4 | 16 |
| 4-2 | 19.3,20.3 |
| 3-2 | 14,15 |
| 2-1 | 9 |
| 13-1 | 16.2 |
| 11-2 | 15,17 |
| 17-2 | 13,14 |
参考文献
- 腺病毒介导人血管内皮细胞生长因子基因感染NIH/3T3细胞的实验研究 第二军医大学学报 > 2008年8期
- 摘要：...:探讨腺病毒介导人血管内皮细胞生长因子(hVEGF)基因感染NIH3T3细胞后目的基...
- 从转录水平研究NIH/3T3细胞周期进程中基因表达的差异与功能 《河南师范大学》 2015年
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- 血清诱导NIH/3T3成纤维细胞增殖过程中核仁蛋白B23含量的变化 《解剖学报》 1995年03期
- 摘要：...间接免疫荧光和蛋白质免疫印迹方法,研究了血清饥饿的NIH3T3成纤维细胞受血清诱导重...
- 电磁脉冲辐射诱导小鼠成纤维细胞系NIH/3T3凋亡的研究 《第五届全国生物医学体视学学术会议、第八届全军军事病理学学术会议、第四届全军定量病理学学术会议论文汇编》 2002年
- 摘要：目的:研究电磁脉冲(EMP)辐射对小鼠成纤维细胞系NIH/3T3)凋亡的影响,并探讨EMP...
- 骨形态发生蛋白4重组腺病毒的构建及其对NIH/3T3细胞成骨分化作用的研究 《中国运动医学杂志》 2008年03期
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