U14细胞（小鼠子宫颈癌细胞）

U14小鼠子宫颈癌细胞系源于1958年，最初是通过将20-甲基胆蒽注入KM幼鼠的子宫颈以诱发癌症，随后将诱导的瘤细胞悬液注射到615小鼠的腹腔中，利用腹水进行原代培养。最终通过将这些细胞悬液在雌性小鼠的皮下进行移植和传代，建立了U14细胞系。

U14细胞参数表

U14小鼠子宫颈癌细胞培养教程

U14细胞复苏步骤

• 准备5mL完全培养基置于15mL离心管中，37℃水浴预热，适合U14细胞的复苏。

• 取出冻存的U14细胞，放入37℃水浴中快速解冻（约1分钟）。

• 将解冻的U14细胞悬液加入到预热培养基的离心管中，1000rpm离心5分钟。

• 吸弃上清后，用2mL完全培养基重悬U14细胞，转移至T25培养瓶中。

• 将培养瓶置于37℃，5% CO2饱和湿度的培养箱中。

• 24小时后观察U14细胞贴壁情况，吸弃旧培养基，换上新鲜预热的完全培养基继续培养。

U14细胞传代步骤

• 观察细胞密度：当U14细胞生长至80%-90%汇合时进行传代。

• 吸弃旧培养基，用1mL无菌PBS清洗一次，去除残余培养基和血清，适合U14细胞的处理。

• 加入1mL 0.25%胰酶，37℃消化1-2分钟，待U14细胞松散后，加入完全培养基终止消化。

• 收集U14细胞悬液，1000rpm离心5分钟，吸弃上清，用完全培养基重悬U14细胞。

• 按1:2比例将重悬的U14细胞加入新的培养瓶中，继续培养。

U14细胞冻存步骤

• 制备冻存液：现用现配，成分为90%胎牛血清和10%DMSO，适合U14细胞的冻存。

• 当U14细胞达到适当密度，吸弃培养基，用PBS润洗后胰酶消化收集U14细胞。
  

• 1000rpm离心5分钟，弃去上清，用冻存液重悬U14细胞。

• 将U14细胞悬液分装到冻存管中，逐步降温（-80℃过夜后转入液氮中长期保存）。
  

注意事项

• 运输用培养基：运输用的培养基不宜再次用于培养U14细胞，应按照说明书重新配置完全培养基。

• 显微镜观察：收到U14细胞后，用显微镜确认U14细胞状态并拍照留存。

• 初次传代：收到U14细胞后首次传代建议使用T25培养瓶按1:2比例传代。

常见问题及解决方法

• U14细胞贴壁不良：

• 原因：运输过程中的振动可能导致U14细胞脱落。

• 解决方法：将培养瓶置于37°C培养箱中静置2-3小时，让U14细胞重新贴壁。

  
  

• U14细胞生长速度缓慢：

• 原因：培养基配方不当或U14细胞密度过低。

• 解决方法：确保使用正确的培养基（DMEM+10% FBS+1% P/S），并保持适当的U14细胞密度。

  
  

• U14细胞污染：

• 原因：操作不当或培养环境不洁净。

• 解决方法：严格遵守无菌操作规程，定期检查U14细胞是否有污染迹象。

  
  

• 传代后U14细胞死亡率高：

• 原因：胰酶消化时间过长或操作不当。

• 解决方法：控制胰酶消化时间（1-2分钟），轻柔操作，避免过度吹打。

  
  

• U14细胞形态异常：

• 原因：培养条件不适或U14细胞状态不佳。

• 解决方法：确保培养环境正确（37°C，5% CO2，饱和湿度），定期观察U14细胞形态。

  
  

• 冻存U14细胞复苏率低：

• 原因：冻存或复苏过程操作不当。

• 解决方法：严格按照标准流程进行冻存和复苏，使用90%胎牛血清+10% DMSO的冻存液。

  
  

• U14细胞密度控制不当：

• 原因：传代比例或频率不适合。

• 解决方法：根据U14细胞生长情况调整传代比例（1:2-1:4），每2-3天换液一次。

  
  

• 培养基变色过快：

• 原因：U14细胞代谢旺盛或污染。

• 解决方法：增加换液频率，检查是否有污染。

  
  

• U14细胞脱落：

• 原因：培养瓶表面处理不当或U14细胞过度生长。

• 解决方法：使用处理过的培养瓶，适时传代避免U14细胞过度生长。

  
  

• 成瘤率下降：

• 原因：U14细胞传代次数过多或培养条件长期不适。

• 解决方法：控制传代次数，定期检查和优化培养条件。