
海拉Hela细胞系(人宫颈癌细胞)
- 来源:Hela人宫颈癌细胞是一种上皮细胞,从一名患有腺癌的31岁黑人女性的宫颈中分离出来。
- 细胞特征:贴壁细胞, 上皮细胞样
- 培养基:生长培养基:MEM+10% FBS+1% P/S
- 其他:海拉细胞呈现出免疫过氧化物酶染色角蛋白阳性,溶血磷脂酰胆碱(lyso-PC)可诱导AP-1活性,以及c-jun N-末端激酶活性(JNK1)
海拉细胞(HeLa Cells)是从一个31岁的黑人女性患者的宫颈癌组织中分离和培养出来的,该患者于1941年在约翰·霍普金斯医院被诊断出患有宫颈癌,并接受了治疗。治疗过程中,医生从她的宫颈癌组织中取了一个样本,这个样本最终成为了海拉细胞系的来源。
这个样本最初被带到科学家的实验室进行研究。与其他细胞不同,海拉细胞不仅成功地存活了下来,而且在继续培养中迅速繁殖。海拉细胞的独特特性被认为是一种突破,因为以前的细胞培养通常都会很快衰老并最终死亡,而海拉细胞却能够无限增殖,成为了第一个成功维持的人类细胞系。
尽管该患者本人并不知道她的细胞被用于科学研究,也没有为此给予任何授权,但她的细胞却成为了医学和科学研究中最重要的工具之一。海拉细胞系被广泛应用于癌症、病毒学、基因工程、药物研发等领域。虽然该患者早已去世,但她的细胞至今仍在全球范围内被广泛使用,并为无数科学研究做出了重要贡献。
Hela细胞模态数为82,范围在70到164之间,98%的细胞中有一条小的末端着丝粒染色体。1385个细胞检测到100%的非整倍体。文献报道了四种典型的HeLa标记染色体。其中,M1拷贝为1号染色体和3号染色体长臂的重排长臂和着丝粒;M2拷贝为3号染色体的短臂和5号染色体的长臂的组合;M3拷贝为5号染色体短臂的一个等染色体;M4拷贝由11号染色体的长臂和19号染色体的一个臂组成。
Hela细胞系对多种病毒具有感染性,包括人腺病毒3、脑心肌炎病毒、人类脊髓灰质炎病毒1、人类脊髓灰质炎病毒2和人类脊髓灰质炎病毒3。
基因表达方面,海拉细胞呈现出免疫过氧化物酶染色角蛋白阳性,溶血磷脂酰胆碱(lyso-PC)可诱导AP-1活性,以及c-jun N-末端激酶活性(JNK1)。同工酶G6PD也存在于海拉细胞中。报道显示,HeLa细胞含有人乳头状瘤病毒18(HPV-18)序列,p53表达较低,而pRB(视网膜母细胞瘤抑制因子)水平正常。
Hela细胞系可用于ISO 17025认证实验室的测试和校准,以检测分析性能,验证或比较测试方法,并在分析验证或实施过程中建立灵敏度、线性和特异性。
Hela细胞系参数表
细胞名称 | Hela人子宫颈癌细胞 (STR鉴定正确) |
细胞别称 | HeLa; Hela; He La; He-La; Henrietta Lacks cells; Helacyton gartleri |
种属来源 | 人 |
年龄性别 | 31岁,女 |
组织来源 | 宫颈腺癌 |
生长特性 | 贴壁生长 |
细胞形态 | 上皮细胞样 |
细胞代数 | 10代以内 |
背景简介 | Hela细胞系是第一个来自人组织和连续培养维持非整倍体上皮样细胞系。Hela细胞是 从31岁女性黑人的宫颈癌建立。 已知Hela细胞系含有人乳头状瘤病毒18序列,需在2级生物安全防护台操作。 Hela细胞角蛋白阳性,p53表达量较低,但表达正常水平的Prb(视网膜母细胞瘤 抑制因子)。 |
生物安全等级 | 2 |
细胞规格 | 1×10^6 cells/T25培养瓶或者1mL冻存管包装 |
支原体检测 | 无 |
基因表达情况 | Lysophosphatidylcholine (lyso-PC) induces AP-1 activity and c-jun N-terminal kinase activity (JNK1) by a protein kinase C-independent pathway. The cells are positive for keratin by immunoperoxidase staining. |
保藏机构 | ATCC; CCL-2 ATCC; CRM-CCL-2 ATCC; CRL-7923 BCRC; 60005 BCRJ; 0100 DSMZ; ACC-57 ECACC; 08011102 ECACC; 93021013;中国医学科学院基础医学 研所细胞资源中心 |
培养基 | 90%MEM+10% FBS+1%PS |
培养条件 | 气相:95%空气+5%二氧化碳;温度:37℃ |
冻存条件 | 无血清冻存液,液氮储存 |
倍增时间 | 约32-48小时 |
培养教程
HELA细胞系培养操作指南
1.实验室准备
确保实验室操作区域符合无菌条件。
准备所需的培养皿、移液器、无菌培养瓶等器材。
准备所需的DMEM培养基、20%胎牛血清、抗生素等试剂。
2. 培养步骤
2.1. 预备工作
预热HELA细胞所需的培养皿或培养瓶至37°C,确保表面干净无细胞残留。
2.2. 细胞培养
向培养皿中加入足够的DMEM培养基,使底部完全覆盖。
添加20%胎牛血清,提供HELA细胞所需的生长因子和营养物质。
加入适量的抗生素以防止细菌和真菌污染。
将培养皿置于37°C恒温培养箱中。
2.3. 细胞分裂
当HELA细胞密度达到80%-90%时,进行细胞分裂。
使用适当的细胞解离液将HELA细胞从培养皿中解离。
将解离后的HELA细胞转移至新的培养皿中,并添加适量的培养基。
2.4. 注意事项
严格遵守无菌操作程序,确保HELA细胞培养的纯度和可靠性。
避免HELA细胞污染或外界物质的污染,以免影响实验结果。
定期观察HELA细胞的生长状态和形态学特征,及时处理细胞的异常变化。
3. 复苏和冻存
复苏:将冻存的HELA细胞融化后转移到新的培养皿中进行培养。
冻存:将HELA细胞悬液与冻存液混合后分装入冻存管,存放于液氮中。
4. 细胞检测和应用
定期检测HELA细胞的纯度、活性和双向污染。
在癌症、病毒学、基因工程、药物研发等领域应用HELA细胞系进行相关实验研究。
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STR鉴定及相关
STR点位信息
Amelogenin | X,Y |
CSF1PO | 10,11 |
D1S1656 | 11,12 |
D2S441 | 11.3,14 |
D2S1338 | 19,20 |
D3S1358 | 15,16 |
D5S818 | 11,12 |
D7S820 | 10 |
D8S1179 | 15,16 (DSMZ; Genomics_Center_BCF_Technion; PubMed=24116068; PubMed=25877200) |
15,16,17 (CLS) | |
D10S1248 | 13 |
D12S391 | 21,25 |
D13S317 | 9,13 |
D16S539 | 12,13 |
D18S51 | 13,14 |
D19S433 | 15.2 (CCRID; CLS; Genomics_Center_BCF_Technion; PubMed=24116068) |
16 (DSMZ) | |
D21S11 | 29,31 |
D22S1045 | 16 |
DYS391 | 12 |
FGA | 22,25 |
Penta D | 9,13 |
Penta E | 15,20 |
TH01 | 9 |
TPOX | 8,9 |
vWA | 17 |
参考文献
- 利用FISH分析HPV16在Hela细胞中的整合位点 肿瘤研究与临床 > 2007年5期
- 摘要:...方法 利用荧光原位杂交(FISH)技术检测HPV16病毒感染导致的Hela细胞中染色...
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