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货号：STM-CL-5444 规格：1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管
RH30细胞系－SJCRH30细胞（人横纹肌肉瘤细胞）
- 来源：肺泡横纹肌肉瘤；骨髓转移
- 细胞特征：贴壁细胞 , 成纤维细胞样
- 培养基：1640+10% FBS+1% P/S
- 其他：gli基因扩增30倍；N-myc基因阳性
RH30细胞系（SJCRH30细胞）源自一名17岁患有肺泡横纹肌肉瘤的白人青少年，其骨髓组织中存在转移性肿瘤。RH30细胞系展示了原始骨骼肌分化的超微结构特征，且适用于免疫学研究。
RH30细胞系（SJCRH30细胞）特性特征
基因表达：gli基因扩增30倍、N-myc基因阳性(未扩增)
转移特性：RH30细胞来源于原发肿瘤的骨髓转移灶
分化特征：显示原始骨骼肌分化的超微结构元素
RH30细胞系（SJCRH30细胞）参数表
| 细胞名称 | RH30细胞系－SJCRH30细胞（人横纹肌肉瘤细胞） |
| 别称 | RH30; RH-30; Rh-30; RH30SJ; SJRH-30; SJRH30; SJ-RH30; SJ-Rh 30; SJRH 30; SJCRH30; RC13; RMS-13; RMS 13; RMS13 |
| 种属来源 | 人类 |
| 年龄性别 | 17岁白人男性 |
| 组织来源 | 骨髓（转移部位） |
| 疾病 | 横纹肌肉瘤 |
| 细胞形态 | 成纤维细胞样 |
| 生长特性 | 贴壁生长 |
| 背景描述 | RH30细胞系是从一名横纹肌肉瘤患儿的骨髓细胞中建立的。来源于转移部位，骨髓 |
| 生物安全等级 | 1 |
| 细胞规格 | 1×10^6 cells/T25培养瓶或1mL冻存管包装 |
| 无菌检测 | 细菌、酵母、支原体检测均为阴性 |
| 病原体检查 | HIV、乙型肝炎、丙型肝炎检查均阴性 |
| 培养基 | RPMI1640培养基；15%胎牛血清；1%双抗 |
| 培养条件 | 气相：95%空气 + 5%二氧化碳；温度：37℃ |
| 倍增时间 | 48-60小时 |
| 传代比例 | 1:2 |
| 换液频率 | 2~3次/周 |
| 冻存条件 | 冻存液：55%基础培养基 + 40% FBS + 5% DMSO；液氮保存 |
| 安全性 | 所有肿瘤和病毒转染的细胞均视为有潜在的生物危害性，必须在二级生物安全台内操作，注意防护 |
| 质量控制 | 细菌、真菌、支原体、内毒素检测均为阴性；细胞复苏活力检测；STR检测 |
| 产品用途 | 仅供科学研究，不可应用于治疗等其他方面 |
培养教程
RH30细胞（SJCRH30细胞）人横纹肌肉瘤细胞培养教程
RH30细胞培养
复苏后的RH30细胞应立即转移至T25培养瓶中，并加入适量的培养基（10-15 mL）。
控制RH30细胞的密度在1×10^5至1×10^6 cells/mL之间，以促进细胞的健康生长。
RH30细胞传代
当RH30细胞的融合度达到80%-90%时，需进行传代操作，以维持细胞活力。
用无钙镁的PBS洗涤RH30细胞，去除培养基残留物。
加入0.25%胰蛋白酶消化RH30细胞，通常需2-3分钟，直至细胞脱落。
加入等体积的培养基中和胰蛋白酶，并将RH30细胞悬液均匀混合。
按1:2的比例将细胞悬液接种至新的培养瓶中，并加入适量的培养基以支持RH30细胞的继续生长。
每周换液2-3次，以去除代谢废物，确保RH30细胞的最佳生长环境。
RH30细胞冻存
在RH30细胞处于对数生长期时进行冻存。收集RH30细胞并用PBS洗涤两次。
制备冻存液：55%基础培养基、40% FBS、5% DMSO，以确保RH30细胞在低温下的存活率。
将RH30细胞悬液分装至冻存管中，密封并逐步降温。
将冻存管以-1℃/分钟的速率在-80℃冰箱中预冷，然后转移至液氮中长期保存RH30细胞。
RH30细胞复苏
从液氮中取出冻存的RH30细胞管，立即放入37℃水浴中，轻轻摇晃以加速解冻。
解冻后的RH30细胞应迅速转移至含有10 mL预热培养基的离心管中。
以1000 rpm离心5分钟，去除DMSO残留，确保RH30细胞的活性不受影响。
将RH30细胞重悬于适量的培养基中，转移至培养瓶中，置于37℃、5% CO₂培养箱中进行培养。
相关资料
STR鉴定及相关
| Amelogenin | X (COG) |
| X,Y (ATCC=CRL-2061; Cosmic-CLP=909716; DepMap=ACH-000833; DSMZ=ACC-489; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20922763; PubMed=21948088; PubMed=25877200) | |
| CSF1PO | 10,11 |
| D1S1656 | 12,16 |
| D2S441 | 11,14 |
| D2S1338 | 17,20 |
| D3S1358 | 15 |
| D5S818 | 12,13 (ATCC=CRL-2061; COG; Cosmic-CLP=909716; DepMap=ACH-000833; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20922763; PubMed=21948088; PubMed=25877200) |
| 12,13,14 (DSMZ=ACC-489) | |
| D7S820 | 10 |
| D8S1179 | 12,15 |
| D10S1248 | 12 |
| D12S391 | 20 |
| D13S317 | 10,11 (PubMed=21948088) |
| 11 (ATCC=CRL-2061; COG; DepMap=ACH-000833; DSMZ=ACC-489; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20922763; PubMed=25877200) | |
| D16S539 | 12 |
| D18S51 | 15,16 |
| D19S433 | 14,15.2 (ATCC=CRL-2061; COG; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20922763) |
| 14,16 (DSMZ=ACC-489) | |
| D21S11 | 29,31.2 (ATCC=CRL-2061; COG; DepMap=ACH-000833; DSMZ=ACC-489; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20922763) |
| 31.2 (PubMed=25877200) | |
| D22S1045 | 16,17 |
| FGA | 22 |
| Penta D | 11 (PubMed=25877200) |
| 11,12 (ATCC=CRL-2061; DepMap=ACH-000833; DSMZ=ACC-489; Technion Genomics Center BCF) | |
| Penta E | 7 (PubMed=25877200) |
| 7,17 (ATCC=CRL-2061; DepMap=ACH-000833; DSMZ=ACC-489; Technion Genomics Center BCF) | |
| TH01 | 9,9.3 |
| TPOX | 8,11 (ATCC=CRL-2061; COG; Cosmic-CLP=909716; DepMap=ACH-000833; DSMZ=ACC-489; Technion Genomics Center BCF; PubMed=20922763; PubMed=21948088) |
| 11 (PubMed=25877200) | |
| vWA | 17,18 |
参考文献
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