货号：STM-CL-6106a 规格：1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管

hepa1-6-luc细胞（小鼠肝癌细胞荧光素酶标记）

来源：C57L 小鼠的 BW7756 肝癌
细胞特征：贴壁细胞 , 上皮细胞样
培养基：DMEM+10% FBS+1mM Sodium Pyruvate+1% P/S
其他：hepa1-6-luc细胞通过慢病毒转染的方式携带 Luc 基因

Tags：小鼠肝癌细胞

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友情提示:本库细胞资源的部分背景和功能特性等相关信息来源于官方数据库及公开文献的检索结果，仅供参考。

Hepa 1-6-Luc细胞是以小鼠肝癌细胞 Hepa 1-6 为亲本建立的稳定荧光素酶报告基因细胞株。Hepa 1-6细胞来源于 C57L 小鼠的 BW7756 肝癌，属于小鼠肝源性肿瘤细胞，呈上皮样、贴壁生长，并具有白蛋白、甲胎蛋白（AFP）、α1-抗胰蛋白酶和淀粉酶等肝源性相关特征。Hepa 1-6-Luc细胞在亲本细胞基础上通过基因导入稳定表达 Firefly luciferase（萤火虫荧光素酶）；Cellosaurus 收录的 Hepa 1-6-Luc（CVCL_C8Y7）显示，其Luc来源为 Photinus pyralis，并整合有 pac/PuroR 嘌呤霉素抗性基因。

Hepa 1-6-Luc细胞在加入 D-luciferin 等相应底物后可产生生物发光信号，可通过生物发光成像（BLI）对Luc阳性细胞进行检测和动态示踪。在实验条件一致的情况下，发光信号可作为细胞存活或肿瘤负荷变化的间接指标，因此特别适用于需要连续观察的体内肿瘤研究。稳定表达Firefly luciferase的Hepa 1-6细胞能够较好地保持亲本细胞的主要生物学特征，并可利用BLI连续监测体内肿瘤的生长和存活变化。需要注意BLI信号还会受到Luc表达水平、底物、组织深度及光学检测条件等因素影响，通常用于同一实验体系内的相对定量和动态比较，不能直接等同于绝对肿瘤细胞数量。

Hepa 1-6-Luc细胞兼具小鼠肝癌细胞模型和荧光素酶活体示踪两方面特点，可用于小鼠肝癌皮下或原位移植模型、肿瘤生长及负荷动态监测、抗肿瘤药物筛选与药效评价，以及肿瘤免疫、免疫检查点治疗和细胞免疫治疗等研究。

hepa1-6-luc细胞（小鼠肝癌细胞荧光素酶标记）特性特征

hepa1-6-luc细胞保留部分肝细胞谱系及肝癌分化特征，可检测到 Albumin、AFP、α1-antitrypsin 等肝源性相关分子。
上皮性标志：可表达 KRT18/CK18 等上皮相关标志物。
胆管/祖细胞相关特征：KRT7、KRT19 通常较低，不属于典型的胆管细胞样高表达模型。
MHC-I表达：hepa1-6-luc细胞基础状态下 H-2Kᵇ、H-2Dᵇ 等MHC-I分子相对较低，可用于研究肿瘤抗原呈递及免疫识别。
抗原呈递相关基因：涉及 B2m、Tap1、Tap2、Psmb8、Psmb9、H2-K1、H2-D1 等分子。
PD-L1表达：可表达 PD-L1/CD274，其表达具有条件依赖性，并可受到 IFN-γ 等炎症信号诱导。
免疫治疗研究：适用于PD-1/PD-L1轴、T细胞/NK细胞杀伤及肿瘤免疫微环境等研究。
信号通路特征：可用于 Wnt/β-catenin 相关肿瘤机制研究，并涉及β-catenin、BCL9、c-Myc、Cyclin D1等分子。
报告基因：稳定表达 Firefly luciferase（萤火虫荧光素酶，FLuc）。
筛选标记：相关登记株可携带 pac/PuroR嘌呤霉素抗性基因。
生物发光特性：加入D-luciferin等底物后可产生生物发光信号，可通过BLI进行细胞及肿瘤负荷动态示踪。
主要科研用途：适用于肝癌生物学、肿瘤免疫、抗肿瘤药物筛选与药效评价、免疫治疗、细胞治疗及活体生物发光成像等研究。

hepa1-6-luc细胞（小鼠肝癌细胞荧光素酶标记）参数表

细胞名称	hepa1-6-luc细胞（小鼠肝癌细胞荧光素酶标记）
细胞英文名称	Hepa 1-6-Luc
别名	HEPA 1-6_luc；HEPA1-6-LUC；Hepa-1-6-luc；Hepa1-6-luc；Hepa 1-6/Luc；Hepa1-6/LUC
亲本细胞	Hepa 1-6。其常见同义名包括 Hepa1-6、Hepa-1-6、HEPA 1-6。
上游细胞谱系	C57L/J 小鼠自发性 BW7756 肝癌 → Hepa-1 细胞系 → Hepa 1-6 细胞 → 稳定导入 Luc 报告基因后的 Hepa 1-6-Luc。
肿瘤来源	BW7756 小鼠肝癌；该肿瘤在 C57L/J 小鼠中自发形成。Hepa 1-6 为由该肿瘤衍生建立的细胞系。
细胞类型	小鼠肝癌细胞；小鼠肝细胞癌细胞；肿瘤细胞。英文可描述为 murine hepatoma cell line 或 murine hepatocellular carcinoma cell line。
物种	小鼠，Mus musculus。
疾病来源	肝癌/肝细胞癌（hepatoma/hepatocellular carcinoma）。
细胞识别信息	Hepa 1-6 常用 RRID：CVCL_0327；数据库登记的 Hepa 1-6-Luc 常用 RRID：CVCL_C8Y7。建议在论文、SOP、COA 和实验记录中注明细胞来源及 RRID。
生物学属性	长期传代的小鼠肿瘤细胞系；具有部分肝细胞谱系相关表达特征，但并不等同于正常原代肝细胞，也不代表所有人源或小鼠肝细胞癌的分子亚型。
生长方式	贴壁生长。
细胞形态	上皮细胞样（epithelial-like）。常见为多角形或不规则贴壁细胞；细胞密度增高时可呈片状分布。
正常形态观察	正常状态下细胞贴壁均匀，细胞边界相对清晰，胞质较丰富，可呈多角形、梭形或不规则上皮样。细胞状态应结合传代时间、融合度和同批次对照综合判断。
异常形态提示	若出现圆缩、漂浮、贴壁下降、细胞碎片增多、胞质颗粒明显、增殖明显减慢、培养液快速变黄或浑浊，应排查过度消化、过度融合、培养基或血清问题、支原体、细菌/真菌污染及嘌呤霉素应激。
生长特性	肿瘤细胞，具有持续增殖能力；不同传代数、培养基、FBS、细胞密度、药物选择压力和 Luc 表达状态可影响实际生长速度。
参考倍增时间	约 26.99 ± 1.93 小时；另有资料记录约 30 小时。实际倍增时间建议以本实验室生长曲线为准。
推荐传代融合度	通常建议在约 70%–85% 融合度时传代；不建议长期超过 90% 融合度培养。
推荐传代比例	1:3–1:4。可根据细胞增殖速度、接种面积、实验时间安排和细胞状态适当调整。
推荐传代频率	每周 2–3 次。
常规换液频率	通常每 2–3 天换液一次；如细胞密度高、培养液颜色明显变黄、pH 下降或进行药物筛选，应根据实际情况提前换液。
推荐完全培养基	DMEM + 10% FBS + 1 mM Sodium Pyruvate + 1% Penicillin-Streptomycin（P/S）。
培养环境	37°C+5% CO₂+95% 空气
湿度条件	饱和湿度培养。应定期检查培养箱水盘，减少蒸发、渗透压变化和边缘孔效应。
培养容器	常规细胞培养瓶、培养皿、6/12/24/48/96 孔细胞培养板均可使用；进行生物发光检测时应统一板型、孔底颜色和仪器检测参数。
推荐消化液	可采用 0.25% Trypsin-EDTA 或经实验室验证的常规细胞消化液。
消化原则	待细胞边缘收缩、间隙增大、部分细胞开始圆缩时，及时轻拍或吹打使细胞脱落，并加入含血清培养基终止消化。
消化注意事项	应避免消化时间过长、胰酶残留和剧烈吹打。过度消化可能降低贴壁率、活率、表面分子表达及后续转染、免疫杀伤或流式实验质量。
细胞接种建议	常规扩增时应避免极低密度接种；低密度可导致贴壁恢复慢、增殖不稳定和细胞应激。实际接种密度建议根据培养器皿、实验周期和生长曲线优化。
冻存液配方	55% 基础培养基 + 40% FBS + 5% DMSO。
冻存细胞状态	建议选择对数生长期、形态正常、贴壁良好、污染检测合格且活率较高的细胞进行冻存。
冻存降温方式	建议程序降温，或采用约 −1°C/分钟的缓慢降温方式。
短期冻存条件	可置于 −80°C 过夜或按实验室 SOP 规定的短期过渡时间保存；应尽快转入液氮。
长期保存条件	液氮气相保存。
肝源性表达特征	Hepa 1-6 细胞可表达或分泌白蛋白（Albumin/Alb）、甲胎蛋白（AFP/Afp）、α1-抗胰蛋白酶（α1-antitrypsin/Serpina1）和淀粉酶相关产物。
白蛋白表达	可检测 Alb/Albumin，可作为肝细胞来源或肝分化相关表型的辅助指标。Alb 阳性并不表示该细胞等同于正常成熟肝细胞。
AFP 表达	可检测 Afp/AFP。AFP 是肝细胞癌常用的肿瘤相关标志物之一，可用于 qPCR、Western blot、ELISA、免疫荧光或免疫组化辅助验证。
α1-抗胰蛋白酶表达	可检测 Serpina1/α1-antitrypsin 相关表达或分泌特征，反映部分肝细胞蛋白合成功能。
上皮/肝细胞相关标志	可根据研究需要检测 Krt18/CK18 等上皮及肝细胞癌相关标志物。
胆管/肝祖细胞相关标志	Krt7、Krt19、Epcam、Sox9、Prom1/CD133 等应通过本批次检测确定。不能仅根据 Hepa 1-6 名称就将其界定为胆管样、高 CK19 或高肝祖细胞样肿瘤模型。
肿瘤干性相关特征	可检测 CD44、CD133/Prom1、Aldh1a1、Epcam、Sox9、Nanog、Sox2、Oct4 等；Hepa 1-6 不宜默认视为高肿瘤干性或高球形成能力细胞。
EMT/迁移侵袭相关检测	如研究 EMT、迁移或侵袭，可检测 Cdh1/E-cadherin、Cdh2/N-cadherin、Vim/Vimentin、Snai1、Snai2、Zeb1、Twist1、Mmp2、Mmp9。相关表达需随培养条件和药物处理实际验证。
Wnt/β-catenin 相关研究	Hepa 1-6 可用于 Wnt/β-catenin 相关肝癌机制研究；可检测 Ctnnb1、active β-catenin、Bcl9、Myc、Ccnd1/Cyclin D1、Axin2、Lgr5 等。若研究具体驱动突变，不应仅依据文献推断，应对当前细胞批次进行测序或功能验证。
增殖/细胞周期检测	可根据实验目的检测 Ki-67、Pcna、Mki67、Myc、Ccnd1、Cdk4、Cdk6、Cdkn1a/p21、Cdkn1b/p27、Ccnb1 等。
凋亡/应激检测	可检测 Annexin V/PI、cleaved-Caspase-3、Caspase-3、Caspase-9、Bax、Bcl2、PARP、ROS、线粒体膜电位等。
代谢相关检测	可结合肝癌研究需求检测 Hif1a、Vegfa、Slc2a1/GLUT1、Ldha、Fasn、Acaca、Srebf1、Pparα、Cpt1a、Gls、Slc7a5 等。具体表型受血清、氧浓度、细胞密度和药物条件影响。
基础 MHC-I 表达	Hepa 1-6 的基础 MHC-I 表达可能相对偏低。开展抗原特异性 CD8+ T 细胞杀伤或免疫治疗研究时，应预先检测实际批次的 MHC-I 水平。
建议检测的 MHC-I 分子	H-2Kᵇ、H-2Dᵇ、B2m；基因层面可检测 H2-K1、H2-D1、B2m。建议使用流式细胞术进行定量。
抗原加工/呈递相关分子	可检测 Tap1、Tap2、Tapbp、Psmb8、Psmb9、Nlrc5 等，用于评估抗原加工和呈递能力。
PD-L1/CD274 表达	PD-L1 表达具有条件依赖性；在 IFN-γ 等炎症信号刺激下可上调。基线表达水平及诱导幅度应以实际批次、培养状态和检测平台为准。
其他免疫检查点检测	如需开展免疫逃逸研究，可检测 Pdcd1lg2/PD-L2、Galectin-9/Lgals9、Cd47、B7-H3/Cd276、B7-H4/Vtcn1 等；并非所有分子都必然高表达。
免疫实验建议	对 CD8+ T、NK、CAR-T、CAR-NK 或巨噬细胞共培养实验，建议先进行 H-2Kᵇ/H-2Dᵇ、PD-L1、CD44、CD133 和活率检测，并设置 IFN-γ 预刺激或不预刺激对照。
同系模型注意事项	Hepa 1-6 来源于 C57L/J，而非严格意义上的 C57BL/6 来源。若用于 C57BL/6 小鼠，应通过小规模预实验确认成瘤率、肿瘤生长动力学、免疫排斥风险和批间重复性。
Luc 标记类型	稳定表达 Luciferase（Luc）报告基因的生物发光标记细胞。Luc 通常为萤火虫荧光素酶（firefly luciferase，FLuc）。
Luc 导入方式	通过慢病毒转导方式稳定导入 Luc 基因。
Luc 信号性质	为生物发光（bioluminescence）信号，而非 GFP、RFP、mCherry 等荧光蛋白信号。
Luc 发光原理	在适宜底物存在时，Luc 酶催化发光反应。体外常采用发光酶标仪或成像系统读取相对发光单位；体内常采用小动物活体生物发光成像系统检测。
常用发光底物	通常使用 D-luciferin 或与实际 Luc 系统匹配的专用底物。底物浓度、孵育时间、给药方式和采集窗口应经过预实验确定。
发光信号的含义	在相同底物、细胞数、培养条件和仪器参数下，发光信号通常与存活的 Luc 阳性细胞数量或肿瘤负荷呈正相关。
发光信号的局限性	发光值受 Luc 表达量、细胞数、细胞活性、ATP、氧气、底物浓度、底物渗透、细胞代谢、组织深度、动物毛色、血流、肿瘤坏死及仪器参数影响，因此不能直接等同于绝对细胞数。
Luc 稳定性	该细胞为 Luc 稳定转染细胞；随传代次数增加，Luc 发光强度可能逐渐减弱。
Luc 信号下降的可能原因	长期未进行筛选维持、Luc 低表达/阴性细胞比例增加、细胞群异质性、整合表达漂移、传代应激、过度融合、培养条件变化、细胞代谢状态改变或检测条件不一致。
Luc 信号监测建议	建议在复苏后、建立工作细胞库前、关键实验前、动物接种前及长期培养期间定期检测；使用相同细胞数、底物浓度、孵育时间、板型和仪器设置进行横向比较。
标准曲线建议	建议用梯度细胞数建立“细胞数—相对发光强度（RLU）”标准曲线，明确线性范围、检测下限和仪器饱和区间。
Luc 信号恢复策略	当发光信号明显下降时，建议优先复苏低代次留种细胞；如需对当前细胞群进行恢复，可在完成冻存留种后采用嘌呤霉素重新筛选。
嘌呤霉素用途	用于维持或恢复 Luc 阳性细胞群的选择压力，减少 Luc 低表达或阴性细胞的富集。
嘌呤霉素筛选前提	建议在筛选前先冻存留种，保存未经高强度药物压力处理的细胞备份。
建议筛选频率	可每 2–3 代进行一次筛选或评估；实际筛选频率应以 Luc 信号稳定性、细胞状态和实验需求为依据。
初始嘌呤霉素浓度	建议先使用 1 μg/mL 嘌呤霉素的完全培养基进行维持培养或筛选。
强化筛选浓度	当细胞状态较好、存活稳定时，可逐步提高至 2 μg/mL。
最高参考浓度	可逐步升至最高 5 μg/mL。高浓度使用时应密切监测细胞形态、贴壁率、死亡率和增殖速度。
低剂量维持策略	如高浓度嘌呤霉素导致细胞活力明显下降，可改用 0.5–1 μg/mL 嘌呤霉素持续培养以维持选择压力。
嘌呤霉素优化建议	建议针对实际到货批次、实际培养基和 FBS 批次进行嘌呤霉素 kill curve，以确定最低有效维持浓度和适合的强化筛选浓度。
筛选期间换液	筛选期间应根据细胞死亡情况及时更换含药培养基，清除死亡细胞和碎片；频率可视细胞状态调整。
关键实验前撤药	进行细胞增殖、药物敏感性、代谢、转录组、蛋白组、免疫杀伤、转染或动物实验前，应评估是否撤除嘌呤霉素并给予恢复期，避免选择药物直接影响实验结论。
抗性标记注意事项	某些 Hepa 1-6-Luc 构建可能含 PuroR/pac 基因，但不同供应商构建不一定完全相同；是否含嘌呤霉素抗性及其维持条件应以实际载体图谱、COA 和供应商资料为准。
体外应用	可用于肝癌细胞增殖、凋亡、细胞周期、迁移、侵袭、EMT、肿瘤代谢、氧化应激、缺氧、细胞信号通路及药物作用机制研究。
药物筛选应用	可用于化疗药、靶向药、抗体药物、代谢抑制剂、表观遗传药物、免疫调节剂及联合治疗方案的体外药效评价。
3D 培养应用	可用于肿瘤球、悬滴球、超低吸附培养和其他 3D 模型；需注意 3D 球体内底物渗透、氧梯度和细胞坏死对 Luc 信号的影响。
免疫杀伤应用	可用于 CD8+ T 细胞、NK 细胞、CAR-T、CAR-NK、巨噬细胞以及双抗/检查点抑制剂相关共培养实验。
免疫杀伤读数建议	Luc 发光下降可作为肿瘤细胞相对负荷降低的指标，但建议同步采用 Annexin V/PI、活死染料、绝对计数珠、流式细胞计数或成像方法进行正交验证。
转染应用	Hepa 1-6 可作为转染宿主；Hepa 1-6-Luc 也可进一步进行质粒转染、病毒转导或基因编辑。应注意新导入载体的筛选标记不得与 PuroR/嘌呤霉素体系冲突。
体内应用	可用于皮下荷瘤、原位肝癌、转移相关模型和其他接种途径的小鼠肿瘤模型；Luc 标记有利于非侵入性连续追踪肿瘤细胞负荷。
支原体检测	建议在复苏后、长期培养中、建立细胞库前、动物实验前和所有关键功能实验前进行检测。可按实验室 SOP 定期检测，如每月一次或每 4–6 周一次。
建议留样信息	建议保留早代冻存细胞、DNA、RNA、蛋白及对应的 Luc 发光数据；记录细胞批号、传代数、培养基、血清批次、筛选药物浓度、检测日期与操作者。
生物安全与实验室管理	建议在 II 级生物安全柜内进行细胞操作，并遵循机构针对肿瘤细胞、慢病毒构建来源细胞、抗性基因细胞及动物实验的生物安全 SOP。
适用范围	仅供科研使用（Research Use Only, RUO）。
批次差异声明	不同来源的 Hepa 1-6-Luc 可能在 Luc 载体、病毒构建方式、整合位点、Luc 表达强度、抗性标记、筛选方式、传代历史、细胞群体组成和体内成瘤性上存在差异。关键参数应以实际批次 COA、构建资料和本实验室验证结果为准。

培养教程

hepa1-6-luc小鼠肝癌细胞荧光素酶标记培养教程

hepa1-6-luc细胞复苏

复苏前将完全培养基预温至37°C，准备T25培养瓶，并预先加入4–5 mL完全培养基。同时准备15 mL无菌离心管，并确认培养箱温度稳定在37°C、CO₂浓度为5%。
hepa1-6-luc细胞冻存复苏后处于应激恢复阶段，首次复苏时建议暂不加入嘌呤霉素，使细胞优先恢复贴壁和增殖状态。待细胞状态稳定并完成首次传代后，再根据实验需求决定是否进行嘌呤霉素筛选或维持。

复苏步骤

从液氮中取出冻存管，立即放入37°C水浴中快速融化，并轻轻晃动。
当冻存液基本融化、仅剩少量冰晶时立即取出，尽量缩短细胞在含DMSO冻存液中的暴露时间。
用70%乙醇擦拭冻存管外壁，待干燥后转入生物安全柜。
将细胞悬液缓慢加入含5–8 mL预温完全培养基的15 mL离心管中，并轻轻混匀。
以约200–300 × g离心3–5分钟。
小心弃去上清，尽量去除含DMSO的培养液，避免扰动细胞沉淀。
加入1–2 mL新鲜完全培养基，轻柔吹打使细胞均匀重悬。
将细胞悬液接种至预先加入4–5 mL完全培养基的T25培养瓶中。
前后、左右轻轻移动培养瓶，使细胞均匀分布。
将培养瓶置于37°C、5% CO₂培养箱中培养。

复苏后处理

复苏后早期出现部分圆形、漂浮细胞及少量碎片属于常见的复苏应激表现。建议在12–24小时观察细胞贴壁和形态，并根据细胞状态更换培养基。

一般情况下，hepa1-6-luc细胞在复苏后应先恢复正常贴壁和增殖。待细胞达到约70%–85%融合度后进行首次传代。重要实验使用前建议确认细胞状态、活率及支原体检测结果。

hepa1-6-luc细胞传代

传代前将完全培养基预温至37°C，并准备无钙、无镁PBS和0.25% Trypsin-EDTA。根据预计细胞数量准备新的培养瓶。
建议记录细胞名称、传代日期、传代数、融合度、培养基批次以及是否使用嘌呤霉素。

传代步骤

显微镜下观察细胞，确认融合度约为70%–85%，细胞形态正常且无明显污染。
吸除培养瓶中的旧培养基。
加入适量无钙、无镁PBS轻柔清洗细胞一次。

T25：约2–3 mL；
T75：约5–10 mL。

吸尽PBS。
加入0.25% Trypsin-EDTA，使细胞充分接触消化液。

T25：约0.5–1 mL；
T75：约1.5–2 mL。

置于37°C条件下进行消化，并持续观察细胞状态。
当细胞逐渐圆缩、细胞间隙增大并开始脱落时，轻拍培养瓶辅助细胞脱落。
多数细胞脱落后立即加入完全培养基终止消化。
轻柔吹打约3–5次，使细胞形成均匀悬液，避免剧烈吹打及产生大量气泡。
根据需要进行细胞计数和活率检测。
按约1:3–1:4比例进行常规传代，并根据实际增殖速度进行调整。
将细胞接种至含预温完全培养基的新培养瓶中。
轻轻前后、左右移动培养瓶，使细胞均匀分布。
放入37°C、5% CO₂培养箱继续培养。

传代注意事项

hepa1-6-luc细胞传代时应避免消化时间过长。过度消化或剧烈吹打可能造成细胞膜损伤，影响贴壁和后续增殖。
用于Luc检测、药物实验、免疫细胞共培养或动物实验时，建议使用处于对数生长期、形态良好、活率较高的细胞，并尽量控制细胞传代次数。

hepa1-6-luc细胞冻存

建议选择处于对数生长期、融合度约70%–85%、形态正常且增殖状态良好的hepa1-6-luc细胞进行冻存。
冻存前应确认细胞无明显污染，重要细胞库建议完成支原体检测，并记录细胞传代数及Luc信号状态。
本培养方案采用冻存液：
55%基础培养基 + 40% FBS + 5% DMSO。
冻存管标签建议注明细胞名称、批次、传代数、冻存日期、细胞数量及是否经过嘌呤霉素筛选。

冻存步骤

选择融合度约70%–85%的健康细胞。
按常规传代方法消化并收集细胞。
以约200–300 × g离心3–5分钟。
小心弃去上清。
使用冻存液轻柔重悬细胞，使细胞分散均匀。
建议每管冻存约1×10⁶–3×10⁶个活细胞，具体数量可根据实验室条件进行调整。
将细胞悬液分装至冻存管中，通常每管约1 mL。
在冻存管上完整标注细胞信息。
使用程序降温盒或其他能够实现约1°C/min降温的方式进行缓慢降温。
放入−80°C冰箱过夜。
次日尽快转移至液氮中进行长期保存。
更新细胞库存记录，包括冻存位置、传代数、冻存日期及相关质量检测结果。

hepa1-6-luc细胞冻存管理

建议采用低代次细胞建立工作细胞库，减少长期连续传代引起的细胞表型变化以及Luc表达漂移。
对于经过嘌呤霉素筛选的hepa1-6-luc细胞，应记录筛选浓度和处理时间，并建议同时保留筛选前后的冻存细胞。复苏新的冻存批次后，可重新观察细胞形态、活率及Luc信号，以确认细胞状态稳定。
同一冻存管复苏后不建议再次冻回。进行长期实验时，应从独立冻存管重新建立培养，以降低反复冻融和长期传代对细胞状态的影响。

STR鉴定及相关

STR 位点	参考等位基因型
Mouse STR 1-1	14, 15, 16
Mouse STR 1-2	13
Mouse STR 2-1	14
Mouse STR 3-2	10
Mouse STR 4-2	18.3, 19.3
Mouse STR 5-5	17
Mouse STR 6-4	18, 19
Mouse STR 6-7	15
Mouse STR 7-1	25.2
Mouse STR 8-1	15
Mouse STR 11-2	16
Mouse STR 12-1	17
Mouse STR 13-1	17.2
Mouse STR 15-3	17, 18, 19
Mouse STR 17-2	14
Mouse STR 18-3	16, 17
Mouse STR 19-2	10, 11
Mouse STR X-1	25

参考文献

Huh-7肝癌干细胞培养的方法学建立及雷公藤红素抑制Huh-7肝癌干细胞的作用机制《安徽中医药大学》 2017年: 摘要：目的建立Huh7肝癌干细胞的培养体系并研究雷公藤红素抑制Huh7肝癌干细胞的作用机制。方法...
DPT、SPON1基因过表达对人肝癌细胞SK-Hep-1、HepG2增殖及侵袭迁移的影响《广州医科大学》 2018年: 摘要：...研究皮肤桥蛋白(DPT)和底板反应蛋白(SPON1)基因过表达后对肝癌细胞增殖、迁移...
靶向药物联合应用对肝癌细胞SK-Hep-1增殖的影响及其机制肿瘤防治研究 > 2022年11期: 摘要：目的探讨靶向药物联合应用对多驱动基因调控增殖的肝癌细胞SK-Hep-1的影响及作用机制....
绞股蓝含药血浆对人肝癌Huh-7细胞的增殖、迁移及TGF-β_1的影响《广西中医药大学》 2017年: 摘要：目的:观察绞股蓝(Gynostemma pentaphyllum GP)含药血浆对人肝癌H...
山奈酚对大鼠肝癌细胞CBRH7919的增殖抑制及诱导凋亡作用《广州中医药大学学报》 2010年03期: 摘要：【目的】观察山奈酚对大鼠肝癌细胞CBRH7919增殖抑制、诱导凋亡和细胞周期的影响。【方法...; 查看完整内容 >