
TOV112D细胞株(人上皮性卵巢癌细胞株)
- 来源:卵巢子宫内膜样癌
- 细胞特征:贴壁细胞 , 上皮细胞样
- 培养基:42.5% MCDB105+42.5% M199+15% FBS+1% P/S
- 其他:与TOV-21G和OV-90细胞系相比,TOV-112D细胞系在3p24染色体上没有缺失
TOV112D细胞是来源于人上皮性卵巢癌的细胞系,用于研究卵巢癌的病理机制和进行药物筛选。TOV112D细胞株最初于1992年10月从一名42岁的女性患者中分离出来,患者患有早发性恶性卵巢腺癌。分离工作由美国加利福尼亚大学洛杉矶分校(UCLA)的Shin Imai博士团队完成。
TOV-112D细胞系的染色体核型显示为52,XX,具有多种染色体的加倍或增加,例如X染色体的增加、1号和22号染色体的增加,以及多个染色体的复制。TOV-112D细胞系是研究卵巢癌的重要工具,尤其在病理研究和新药开发中具有广泛应用。
TOV112D细胞株特性特征
致瘤性:TOV112D细胞在裸鼠体内表现出致瘤性,能够形成肿瘤。
集落形成:在软琼脂培养基中能够形成集落,显示出TOV112D肿瘤细胞的特性。
HER2/neu:阳性,表明TOV112D细胞系可能对某些靶向治疗敏感。
p53:存在突变(突变,Arg-->His外显子6密码子175突变),TOV112D细胞在肿瘤发生中可能存在p53通路的异常。
角蛋白表达:TOV112D细胞系表达角蛋白,进一步支持其上皮细胞的特性。
与TOV-21G和OV-90细胞系相比,TOV-112D细胞系在3p24染色体上没有缺失,显示出其独特的基因组特征
TOV112D细胞株参数表
细胞名称 | TOV112D细胞株(人上皮性卵巢癌细胞株) |
别称 | TOV-112d; TOV112D; TOV-112; TOV112 |
细胞来源 | 42岁女性早发性卵巢癌患者肿瘤组织 |
分离实验室 | 美国加利福尼亚大学洛杉矶分校(UCLA)Shin Imai博士实验室 |
细胞类型 | 人上皮性卵巢癌细胞 |
细胞形态 | 上皮样贴壁生长 |
致瘤性 | 裸鼠致瘤,软琼脂集落形成 |
癌基因特征 | HER2/neu阳性,p53 Arg175His突变 |
基因表达 | 表达角蛋白 |
培养基 | 42.5% MCDB105+42.5% M199+15% FBS+1% P/S |
培养环境 | 气相:空气,95%;CO2,5% 温度:37℃ |
传代方法 | 0.25%胰酶消化,1:2-1:3传代,3-4天换液1次 |
细胞数量 | 大于1x10^6 |
包装规格 | T25培养瓶 |
储存条件 | 液氮或干冰 |
污染防治 | 可在培养基中加3u/ml两性霉素B或制霉菌素B或D或双抗 |
相似细胞系 | 50.B1、HEK293A、KE-39、M059J、Reuber-H-35 hepatoma、MA-782等 |
培养教程
TOV112D人上皮性卵巢癌细胞株培养教程
TOV112D细胞复苏
取出TOV112D细胞冻存管,迅速放入37°C的水浴中解冻,轻轻摇晃冻存管,以确保均匀解冻,直至TOV112D细胞完全液化(约1-2分钟)。
将解冻后的TOV112D细胞悬液迅速转移至15 mL离心管中,加入4 mL预热至37°C的DMEM高糖培养基,轻轻混匀以稀释DMSO。
在1000 rpm离心3分钟,弃去上清液。
加入1-2 mL新鲜的DMEM培养基,轻轻吹打以重悬TOV112D细胞沉淀。
将重悬后的TOV112D细胞悬液转移至10 cm培养皿中,加入约8 mL DMEM培养基,并将其放置在37°C、5% CO2的培养箱中过夜培养。
TOV112D细胞传代
当TOV112D细胞达到80%-90%的汇合度时,可进行传代操作。
弃去培养瓶中的培养基,用PBS缓冲液洗涤TOV112D细胞1-2次,以去除残留的培养基成分。
向培养瓶中加入1 mL 0.25%胰酶-0.53 mM EDTA消化液,确保覆盖TOV112D细胞单层,随后弃去多余消化液。
将培养瓶放入37°C培养箱中消化1分钟左右,观察TOV112D细胞是否开始变圆并逐渐脱落。
当大部分TOV112D细胞脱落时,立即取出培养瓶,加入等量的DMEM培养基中和胰酶。
轻轻吹打培养瓶底部,使TOV112D细胞完全脱落并均匀悬浮。
将TOV112D细胞悬液转移至离心管中,1000 rpm离心3分钟,弃去上清液。
加入适量新鲜DMEM培养基重悬TOV112D细胞,按适当比例(通常为1:3至1:5)分装至新的培养瓶中,继续培养。
提高TOV112D细胞转染效率的策略
选择合适的转染试剂:使用专为贴壁细胞设计的高效转染试剂,如Lipofectamine 2000、JetPEI或Fugene HD。这些试剂通常能显著提高TOV112D细胞的转染效率。
细胞密度:确保TOV112D细胞在转染前密度在70%-90%之间,这样能优化细胞的转染效率。
转染时间:根据转染试剂的使用说明,优化TOV112D细胞的转染时间。通常转染时间为4-24小时,应根据实验需求进行调整。
培养基选择:在转染过程中使用无血清培养基,以减少血清对TOV112D细胞转染效率的干扰。转染完成后24小时内更换为含血清的培养基。
增加DNA或RNA的用量:根据实验需求,优化核酸浓度。质粒DNA或siRNA的浓度可在0.5-5 µg/mL范围内调整,以提高TOV112D细胞的转染效率。
采用电转染技术:如果实验条件允许,电转染(如使用Nucleofector)是一种有效提高TOV112D细胞转染效率的技术,尤其适用于难以转染的细胞系。
监测TOV112D细胞转染效果:在转染质粒中加入报告基因(如GFP或Luciferase),以便于监测TOV112D细胞的转染效率和活力,及时调整实验条件。
细胞预处理:在转染前对TOV112D细胞进行短暂的预处理(如使用低浓度的胰酶处理)可以提高细胞膜的通透性,从而提高转染效率。
优化TOV112D细胞的培养条件:确保TOV112D细胞处于最佳状态下生长,包括适当的温度、CO2浓度和湿度等,以提高细胞活力和转染效率。
反复优化:通过多次实验,逐步优化各个参数,记录TOV112D细胞的实验结果,最终找到最佳的转染条件。
相关资料
STR鉴定及相关
Amelogenin | X |
CSF1PO | 12 |
D2S1338 | 19,24 |
D3S1358 | 15 |
D5S818 | 10 |
D7S820 | 9,10 |
D8S1179 | 9,13 |
D13S317 | 8 |
D16S539 | 9,12 (ATCC=CRL-3593; Cosmic-CLP=1299070; Direct_author_submission; PubMed=22710073; PubMed=25877200; PubMed=30485824) |
11,12 (PubMed=25230021) | |
D18S51 | 17 |
D19S433 | 14 |
D21S11 | 31 |
FGA | 20 |
Penta D | 9 |
Penta E | 11 |
TH01 | 6 |
TPOX | 8,11 |
vWA | 18 |