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TOV112D细胞株(人上皮性卵巢癌细胞株)货号:STM-CL-5464 规格:1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管

TOV112D细胞株(人上皮性卵巢癌细胞株)

  • 来源:卵巢子宫内膜样癌
  • 细胞特征:贴壁细胞 , 上皮细胞样
  • 培养基:42.5% MCDB105+42.5% M199+15% FBS+1% P/S
  • 其他:与TOV-21G和OV-90细胞系相比,TOV-112D细胞系在3p24染色体上没有缺失
价格:¥ 1,700.00
提供STR鉴定报告

TOV112D细胞是来源于人上皮性卵巢癌的细胞系,用于研究卵巢癌的病理机制和进行药物筛选。TOV112D细胞株最初于1992年10月从一名42岁的女性患者中分离出来,患者患有早发性恶性卵巢腺癌。分离工作由美国加利福尼亚大学洛杉矶分校(UCLA)的Shin Imai博士团队完成。

TOV-112D细胞系的染色体核型显示为52,XX,具有多种染色体的加倍或增加,例如X染色体的增加、1号和22号染色体的增加,以及多个染色体的复制。TOV-112D细胞系是研究卵巢癌的重要工具,尤其在病理研究和新药开发中具有广泛应用。

TOV112D细胞株特性特征

  • 致瘤性:TOV112D细胞在裸鼠体内表现出致瘤性,能够形成肿瘤。

  • 集落形成:在软琼脂培养基中能够形成集落,显示出TOV112D肿瘤细胞的特性。

  • HER2/neu:阳性,表明TOV112D细胞系可能对某些靶向治疗敏感。

  • p53:存在突变(突变,Arg-->His外显子6密码子175突变),TOV112D细胞在肿瘤发生中可能存在p53通路的异常。

  • 角蛋白表达:TOV112D细胞系表达角蛋白,进一步支持其上皮细胞的特性。

  • 与TOV-21G和OV-90细胞系相比,TOV-112D细胞系在3p24染色体上没有缺失,显示出其独特的基因组特征

TOV112D细胞株参数表

细胞名称TOV112D细胞株(人上皮性卵巢癌细胞株)
别称TOV-112d; TOV112D; TOV-112; TOV112
细胞来源42岁女性早发性卵巢癌患者肿瘤组织
分离实验室美国加利福尼亚大学洛杉矶分校(UCLA)Shin Imai博士实验室
细胞类型人上皮性卵巢癌细胞
细胞形态上皮样贴壁生长
致瘤性裸鼠致瘤,软琼脂集落形成
癌基因特征HER2/neu阳性,p53 Arg175His突变
基因表达表达角蛋白
培养基42.5% MCDB105+42.5% M199+15% FBS+1% P/S
培养环境气相:空气,95%;CO2,5% 温度:37℃
传代方法0.25%胰酶消化,1:2-1:3传代,3-4天换液1次
细胞数量大于1x10^6
包装规格T25培养瓶
储存条件液氮或干冰
污染防治可在培养基中加3u/ml两性霉素B或制霉菌素B或D或双抗
相似细胞系50.B1、HEK293A、KE-39、M059J、Reuber-H-35 hepatoma、MA-782等

培养教程

TOV112D人上皮性卵巢癌细胞株培养教程

TOV112D细胞复苏

  • 取出TOV112D细胞冻存管,迅速放入37°C的水浴中解冻,轻轻摇晃冻存管,以确保均匀解冻,直至TOV112D细胞完全液化(约1-2分钟)。

  • 将解冻后的TOV112D细胞悬液迅速转移至15 mL离心管中,加入4 mL预热至37°C的DMEM高糖培养基,轻轻混匀以稀释DMSO。

  • 在1000 rpm离心3分钟,弃去上清液。

  • 加入1-2 mL新鲜的DMEM培养基,轻轻吹打以重悬TOV112D细胞沉淀。

  • 将重悬后的TOV112D细胞悬液转移至10 cm培养皿中,加入约8 mL DMEM培养基,并将其放置在37°C、5% CO2的培养箱中过夜培养。

TOV112D细胞传代

  • 当TOV112D细胞达到80%-90%的汇合度时,可进行传代操作。

  • 弃去培养瓶中的培养基,用PBS缓冲液洗涤TOV112D细胞1-2次,以去除残留的培养基成分。

  • 向培养瓶中加入1 mL 0.25%胰酶-0.53 mM EDTA消化液,确保覆盖TOV112D细胞单层,随后弃去多余消化液。

  • 将培养瓶放入37°C培养箱中消化1分钟左右,观察TOV112D细胞是否开始变圆并逐渐脱落。

  • 当大部分TOV112D细胞脱落时,立即取出培养瓶,加入等量的DMEM培养基中和胰酶。

  • 轻轻吹打培养瓶底部,使TOV112D细胞完全脱落并均匀悬浮。

  • 将TOV112D细胞悬液转移至离心管中,1000 rpm离心3分钟,弃去上清液。

  • 加入适量新鲜DMEM培养基重悬TOV112D细胞,按适当比例(通常为1:3至1:5)分装至新的培养瓶中,继续培养。

提高TOV112D细胞转染效率的策略

  • 选择合适的转染试剂:使用专为贴壁细胞设计的高效转染试剂,如Lipofectamine 2000、JetPEI或Fugene HD。这些试剂通常能显著提高TOV112D细胞的转染效率。

  • 细胞密度:确保TOV112D细胞在转染前密度在70%-90%之间,这样能优化细胞的转染效率。

  • 转染时间:根据转染试剂的使用说明,优化TOV112D细胞的转染时间。通常转染时间为4-24小时,应根据实验需求进行调整。

  • 培养基选择:在转染过程中使用无血清培养基,以减少血清对TOV112D细胞转染效率的干扰。转染完成后24小时内更换为含血清的培养基。

  • 增加DNA或RNA的用量:根据实验需求,优化核酸浓度。质粒DNA或siRNA的浓度可在0.5-5 µg/mL范围内调整,以提高TOV112D细胞的转染效率。

  • 采用电转染技术:如果实验条件允许,电转染(如使用Nucleofector)是一种有效提高TOV112D细胞转染效率的技术,尤其适用于难以转染的细胞系。

  • 监测TOV112D细胞转染效果:在转染质粒中加入报告基因(如GFP或Luciferase),以便于监测TOV112D细胞的转染效率和活力,及时调整实验条件。

  • 细胞预处理:在转染前对TOV112D细胞进行短暂的预处理(如使用低浓度的胰酶处理)可以提高细胞膜的通透性,从而提高转染效率。

  • 优化TOV112D细胞的培养条件:确保TOV112D细胞处于最佳状态下生长,包括适当的温度、CO2浓度和湿度等,以提高细胞活力和转染效率。

  • 反复优化:通过多次实验,逐步优化各个参数,记录TOV112D细胞的实验结果,最终找到最佳的转染条件。

相关资料

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STR鉴定及相关

AmelogeninX
CSF1PO12
D2S133819,24
D3S135815
D5S81810
D7S8209,10
D8S11799,13
D13S3178
D16S5399,12 (ATCC=CRL-3593; Cosmic-CLP=1299070; Direct_author_submission; PubMed=22710073; PubMed=25877200; PubMed=30485824)
11,12 (PubMed=25230021)
D18S5117
D19S43314
D21S1131
FGA20
Penta D9
Penta E11
TH016
TPOX8,11
vWA18

参考文献

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