B16细胞（小鼠黑色素瘤细胞）

B16小鼠黑色素瘤细胞系源自C57BL/6小鼠的皮肤黑色素瘤，最初由美国杰克逊实验室于1954年开发。B16细胞系表现为黑色素生成阳性，但大多数细胞在体外培养时并不显色。在某些培养条件下，B16细胞会分泌大量黑色素。无论细胞在体外是否产生黑色素，当其植入C57BL/6小鼠体内后，形成的瘤体均呈现黑色。

B16细胞系包括多个亚型，如B16-F0、B16-F1和B16-F10。其中，B16-F10是B16-F0的亚系，以其显著的转移性而著称，相比之下，B16-F0的转移能力较低。

B16细胞特性特征

• 产生黑色素：B16细胞能够合成和分泌黑色素，这是其作为黑色素瘤细胞的关键特征。
  

• 酪氨酸酶活性：B16细胞表现出高酪氨酸酶活性，酪氨酸酶是黑色素合成的关键酶。

• 高转移性：B16细胞具有在脾脏、肝脏和肺部转移的能力。

• 不同亚系：如B16F10亚系具有较高的肺转移能力。

• 黑色素相关基因：B16细胞表达与黑色素合成相关的基因，如酪氨酸酶基因。
  

• 遗传异质性：B16细胞系表现出遗传和表型的异质性，即使在同一培养物中也可能存在不同的遗传特性。
  

• 致瘤性：B16是一种具有侵袭、迁移和增殖等肿瘤样特性的致瘤细胞系。

• 酪氨酸酶阳性：B16细胞对酪氨酸酶呈强阳性反应，这是鉴定黑色素瘤细胞的重要标志。

• 多种亚型：根据细胞形态和黑色素含量，B16细胞可分为多种亚型，包括大上皮样细胞、小上皮样细胞、梭形细胞、畸形细胞和树枝突细胞。

B16细胞参数表

B16小鼠黑色素瘤细胞培养教程

B16细胞复苏

• 将冻存的B16细胞快速解冻于37°C水浴中。

• 将细胞悬液转移至含预热完全培养基的离心管中。

• 以800 rpm离心5分钟，弃去上清。

• 用新鲜培养基重悬B16细胞，并转移至培养瓶中。

日常培养

• B16细胞为贴壁生长细胞。

• 每2-3天更换培养基一次。

• 当B16细胞密度达到80-90%时，进行传代操作。

传代操作

• 弃去旧培养基，用PBS轻柔洗涤B16细胞1-2次。

• 加入适量0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液，37°C消化2-3分钟。

• 当B16细胞在显微镜下开始变圆并脱落时，加入含血清的完全培养基以终止消化。

• 吹打收集细胞，800 rpm离心5分钟。

• 弃去上清，用新鲜培养基重悬B16细胞。

• 按1:3至1:6的比例接种到新的培养瓶中。

细胞冻存

• 收集对数生长期的B16细胞。

• 使用含10% DMSO的完全培养基作为冻存液。

• 将B16细胞悬液分装到冻存管中，并置于-80°C冰箱或液氮中保存。

特殊应用

• 黑色素生成研究：对于研究B16细胞黑色素生成的特性，可能需要调整培养条件或添加特定试剂。

• 转移研究：选择适合的高转移亚系，如B16-F10，用于研究转移能力。

确保B16细胞纯度和真实性

• 细胞形态观察：定期使用显微镜检查B16细胞的形态特征，确保其保持上皮样和纺锤形的典型特征。

• 黑色素产生检测：通过观察培养基颜色变化或细胞沉淀物颜色来判断B16细胞的黑色素产生。

• 酪氨酸酶活性测定：检测B16细胞的酪氨酸酶活性以验证其特性。

• 基因表达分析：检测与黑色素合成相关的基因表达，如酪氨酸酶基因。

• STR分析：通过短串联重复序列（STR）分析确认B16细胞系的遗传特征。

• 定期鉴定：建议每3-6个月进行一次B16细胞鉴定以确保其纯度和特性。

常见错误及避免措施

• 过度消化：使用胰蛋白酶消化B16细胞时间过长可能导致细胞损伤或死亡。控制消化时间，观察细胞状态。

• 密度控制不当：B16细胞密度过高或过低都会影响生长状态。定期检查并调整细胞密度。

• 培养基更换频率：由于B16细胞可能产生大量黑色素，建议适当增加换液频率以维持良好培养环境。

• 污染问题：操作时注意无菌操作，防止细菌或真菌污染。

• 传代次数过多：长期传代可能导致B16细胞特性改变。控制传代次数，定期验证细胞特性。

• 冻存和复苏不当：不正确的冻存和复苏程序可能导致B16细胞活力下降或特性改变。严格按照冻存和复苏程序操作。

• 忽视细胞异质性：B16细胞可能存在遗传和表型的异质性，影响实验结果的一致性。定期进行细胞鉴定以确保实验结果的可靠性。