货号:STM-CL-5483 规格:1×10⁶cells/T25培养瓶或1mL冻存管
L363细胞(人多发性骨髓瘤细胞系)
- 来源:36岁女性IgG型浆细胞白血病患者的外周血
- 细胞特征:悬浮生长;单个细胞与细胞团并存
- 培养基:1640+10% FBS+1% P/S
- 其他:典型浆细胞表型、复杂核型和多种肿瘤相关基因异常
- 优惠套餐
套餐价:¥2190
L-363细胞(L363)是一株人源恶性浆细胞细胞系,DSMZ保藏编号为ACC-49,Cellosaurus登记编号为CVCL_1357。L363细胞系建立于1977年,来源于一名36岁女性IgG型浆细胞白血病(plasma cell leukemia,PCL)患者的外周血。L363细胞属于血液系统恶性肿瘤细胞模型,在浆细胞肿瘤相关研究中具有较为广泛的应用价值。
从疾病来源来看,L363细胞的原始病例诊断为浆细胞白血病,因此严格意义上不宜将其直接描述为“来源于多发性骨髓瘤患者的细胞”。浆细胞白血病与多发性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)均属于来源于浆细胞的恶性血液系统肿瘤,在细胞分化特征、部分分子异常以及肿瘤生物学方面具有密切联系。L363细胞被广泛纳入多发性骨髓瘤细胞系研究体系,并常被用于多发性骨髓瘤相关实验。
L363细胞主要采用悬浮培养方式生长,通常以单个细胞或细胞聚集体形式存在,一般不形成典型的贴壁单层。培养状态良好时,细胞多呈圆形或卵圆形,体积相对较大,符合恶性浆细胞的形态学特点。随着培养密度增加,细胞可出现一定程度的聚集。其实际增殖速度会受到培养基、血清批次、接种密度、培养环境以及细胞传代状态等因素影响,进行细胞增殖或药物敏感性实验时,需要根据实际培养条件重新建立生长曲线。
L363细胞属于恶性浆细胞来源的肿瘤细胞模型,可用于研究浆细胞肿瘤细胞的增殖、存活、凋亡以及相关分子机制。历史研究资料显示,L-363为EBNA阴性,这一特征可用于其与部分EBV相关B细胞转化模型进行区分。
L363细胞具有明确的恶性浆细胞来源和多发性骨髓瘤相关研究价值,可应用于多种浆细胞肿瘤及血液肿瘤研究。在细胞生物学研究中,可用于观察肿瘤细胞增殖、细胞周期、凋亡及存活相关变化;在药物研究中,可用于抗肿瘤候选药物的体外活性评价,包括细胞活力、增殖抑制、细胞死亡及药物敏感性分析;在分子机制研究中,可用于研究浆细胞肿瘤相关基因、信号通路及肿瘤细胞生存机制。L363细胞也可作为多发性骨髓瘤相关靶点验证、肿瘤免疫及新型治疗策略研究的体外细胞模型。
L363细胞(人多发性骨髓瘤细胞系)特性特征
L363细胞呈圆形或卵圆形,细胞体积相对较大,高密度培养时容易形成细胞团,具有浆细胞样特征,细胞对接种密度较敏感。
免疫表达特征:阳性表达:CD38、CD138、HLA-DR;阴性或低表达:CD3、CD19、CD20、CD10、CD34。
具有复杂的染色体数目和结构异常,可见涉及5q、8q、11q、14q和17p等区域的异常。
代表性基因变异包括:
NRAS Q61H:与RAS/MAPK信号通路相关。
PIK3CA E545K:与PI3K/AKT信号通路相关。
TP53相关变异:与细胞周期、DNA损伤修复和凋亡相关。
部分研究显示L-363细胞具有较高的p18表达,可用于细胞周期调控研究。
病毒学特征:EBNA阴性,EBV PCR阴性。
主要应用:
多发性骨髓瘤和浆细胞白血病研究。
肿瘤细胞增殖、凋亡和细胞周期研究。
抗骨髓瘤药物筛选。
蛋白酶体抑制剂和免疫调节剂研究。
RAS/MAPK、PI3K/AKT等信号通路研究。
CD38、CD138和BCMA等靶点验证。
单克隆抗体、双特异性抗体、ADC和CAR-T研究。
骨髓瘤分子分型、基因组和转录组研究。
L363细胞(人多发性骨髓瘤细胞系)参数表
| 细胞名称 | L363细胞(人多发性骨髓瘤细胞系) |
| 细胞英文名称 | Human L-363 plasma cell leukemia cell line |
| 别名 | L363、L 363;人L-363浆细胞白血病/多发性骨髓瘤相关细胞 |
| 物种 | 人,Homo sapiens |
| 细胞类型 | 恶性浆细胞 |
| DSMZ编号 | ACC-49 |
| Cellosaurus编号 | CVCL_1357 |
| 细胞系分类 | 浆细胞白血病/多发性骨髓瘤相关细胞系 |
| 患者信息 | 36岁女性 |
| 原发疾病 | IgG型浆细胞白血病 |
| 取材部位 | 外周血 |
| 建立年份 | 1977年 |
| 来源性质 | 患者外周血中的恶性浆细胞 |
| 疾病归类说明 | 原始来源为浆细胞白血病,但常作为多发性骨髓瘤相关细胞模型使用 |
| 生长方式 | 悬浮生长 |
| 细胞形态 | 圆形或卵圆形 |
| 细胞大小 | 相对较大 |
| 细胞分布 | 单个细胞与细胞团并存 |
| 聚团情况 | 高密度培养时容易形成细胞团 |
| 贴壁性 | 通常不贴壁 |
| 传代处理 | 轻柔吹打使细胞分散,通常不需要胰酶消化 |
| 形态异常提示 | 碎片明显增多、细胞大量聚团或形态不均一时,应检查细胞密度、培养基和污染情况 |
| 培养基 | 1640+10% FBS+1% P/S |
| 培养温度 | 37°C |
| CO₂浓度 | 5% |
| 湿度 | 饱和湿度 |
| 培养容器 | 常规细胞培养瓶、培养板或培养皿 |
| 换液方式 | 悬浮细胞通常通过离心或静置沉降后更换部分或全部培养液 |
| 培养基外观 | 正常情况下培养液应较清亮,无明显絮状物或异常浑浊 |
| 接种与传代起始密度 | 约2 × 10⁵–5 × 10⁵ cells/mL,需结合实际状态调整 |
| 常规维持密度 | 约2 × 10⁵–1 × 10⁶ cells/mL |
| 过低密度影响 | 恢复慢、增殖缓慢、细胞活率下降 |
| 过高密度影响 | 营养耗竭、代谢废物积累、细胞聚团和活率下降 |
| 常用传代比例 | 可参考1:2左右,但应根据细胞密度和活率调整 |
| 传代时机 | 细胞密度较高、聚团明显或细胞活率开始下降时 |
| 传代操作 | 轻柔吹打,避免剧烈机械损伤 |
| 复苏后处理 | 复苏初期可能有较多碎片,应待细胞状态恢复后再进行正式实验 |
| 倍增时间 | 公开资料报道存在差异,约25小时或65–75小时 |
| 免疫表型 | CD38 阳性 CD138 阳性 HLA-DR 阳性 CD3 阴性 CD19 阴性 CD20 阴性 CD10 阴性 CD34 阴性 CD37 阴性 BCMA 建议使用当前批次进行流式验证 |
| IgG | 患者来源为IgG型,但培养后表达需实验确认 |
| κ/λ轻链 | 建议通过流式或免疫学方法确认 |
| 表型稳定性 | CD38、CD138、BCMA和免疫球蛋白表达可能受代次、培养条件和细胞批次影响 |
| 细胞谱系 | 浆细胞谱系 |
| 主要支持证据 | CD38和CD138阳性 |
| B细胞特征 | CD19、CD20通常阴性 |
| T细胞特征 | CD3阴性 |
| 典型应用 | 浆细胞肿瘤、骨髓瘤靶点和免疫治疗研究 |
| 基因组状态 | 具有复杂肿瘤基因组背景 |
| 染色体特点 | 存在染色体数目和结构异常 |
| 涉及区域 | 可涉及5q、8q、11q、14q和17p等区域 |
| 11q13区域 | 可能存在相关结构异常或断点 |
| 14q32区域 | 可能存在浆细胞肿瘤相关重排 |
| 17p区域 | 与TP53相关肿瘤遗传学研究有关 |
| NRAS | 可见NRAS p.Gln61His,Q61H变异 |
| NRAS相关通路 | RAS/MAPK信号通路 |
| PIK3CA | 可见PIK3CA p.Glu545Lys,E545K变异 |
| PIK3CA相关通路 | PI3K/AKT信号通路 |
| TP53 | 公开资料记录有TP53相关变异 |
| TP53相关功能 | DNA损伤应答、细胞周期和凋亡调控 |
| CDKN2C/p18 | 部分研究显示p18表达较高 |
| 细胞周期特征 | 可用于研究p18/CDKN2C相关细胞周期调控 |
| 结果解释 | 基因和表达信息可能因数据库版本、检测平台和细胞批次不同而变化 |
| 浆细胞相关表达 | CD38、CD138等浆细胞相关标志物表达 |
| B细胞相关表达 | CD19、CD20等典型成熟B细胞标志物通常缺失 |
| 细胞周期相关表达 | 可用于研究p18及其他细胞周期调控分子 |
| 存活相关通路 | RAS/MAPK、PI3K/AKT等通路具有研究价值 |
| 靶点表达 | CD38、CD138和BCMA适用于靶点验证,但需实验确认表达水平 |
| 表达异质性 | 可能存在CD138高表达和低表达亚群 |
| 原始病例类型 | IgG型浆细胞白血病 |
| 体外培养后表达 | 可能与原始患者肿瘤细胞存在差异 |
| IgG分泌 | 需要通过ELISA或其他方法验证 |
| 轻链表达 | 建议检测κ/λ轻链 |
| 相关应用 | 免疫球蛋白分泌、浆细胞分化和BCR相关研究 |
| 病毒学特征 | EBNA 阴性 EBV PCR 阴性 HBV 公开资料未检测到 HCV 公开资料未检测到 HHV-8 公开资料未检测到 HIV-1/HIV-2 公开资料未检测到 HTLV-1/HTLV-2 公开资料未检测到 |
| 肿瘤生物学 | 研究浆细胞白血病和多发性骨髓瘤细胞增殖、存活及凋亡 |
| 药物筛选 | 抗骨髓瘤药物和候选化合物评价 |
| 蛋白酶体抑制剂 | 药物敏感性和耐药机制研究 |
| 免疫调节剂 | 药效和细胞反应评价 |
| 联合用药 | 药物协同或拮抗作用研究 |
| 分子机制 | RAS/MAPK、PI3K/AKT和细胞周期通路研究 |
| 靶点验证 | CD38、CD138、BCMA等靶点分析 |
| 抗体研究 | 单克隆抗体、双特异性抗体和ADC研究 |
| CAR-T研究 | 靶点表达和体外杀伤效果评价 |
| 共培养研究 | 与骨髓基质细胞或免疫细胞共培养 |
| 组学研究 | 基因组、转录组、蛋白组和药物反应研究 |
| 低密度问题 | 可能导致细胞恢复慢和增殖不良 |
| 高密度问题 | 可能造成聚团、营养耗竭和活率下降 |
| 细胞团问题 | 影响计数、给药均一性和流式结果 |
| 表面抗原验证 | 正式实验前建议检测CD38、CD138和BCMA |
| 药物实验要求 | 各组应尽量保持相同细胞密度和活率 |
| 基因信息使用 | 公开突变信息不能替代当前批次的实测结果 |
| 资料描述建议 | 建议写为“来源于浆细胞白血病、用于多发性骨髓瘤研究的细胞系” |
培养教程
L363细胞(人多发性骨髓瘤细胞系)培养教程
一、L363细胞培养条件
L363细胞推荐使用RPMI-1640作为基础培养基,并加入15%热灭活胎牛血清(FBS),即85% RPMI-1640 + 15% FBS。配制好的L363细胞完全培养基应保持澄清,无明显沉淀、絮状物或异常颜色。培养基使用前可适当预温,以减少L363细胞复苏及传代过程中受到的温度刺激。
L363细胞推荐培养条件为:37℃、5% CO₂、饱和湿度。L363细胞属于悬浮细胞,培养过程中主要以单个细胞或细胞聚集体形式存在,一般不会形成典型的贴壁细胞层。因此,L363细胞的培养状态不能按照贴壁细胞的“融合度”进行判断,而应重点观察细胞密度、细胞形态、活率及增殖状态。
L363细胞日常培养建议维持在约0.2–0.5×10⁶ cells/mL。当细胞数量逐渐增加并接近较高培养密度时,应及时进行传代。通常L363细胞可按照1:2~1:3的比例进行传代,传代间隔一般为3–4天,具体时间需要根据实际细胞增殖速度进行调整。
二、L363细胞复苏
L363细胞复苏前,应提前准备37℃培养条件、预温的完全培养基、离心管、移液器以及培养瓶等。复苏时应尽量减少L363细胞在冻存状态和含DMSO环境中的暴露时间。
从液氮中取出L363细胞冻存管后,应迅速放入37℃水浴中进行解冻,并轻轻晃动冻存管,使冻存液均匀受热。待冻存液基本完全融化后立即取出,擦拭并消毒冻存管外壁。
将解冻后的L363细胞悬液缓慢加入预先准备好的完全培养基中,使冻存液中的DMSO得到充分稀释。随后根据实验室常规条件进行温和离心,弃去含DMSO的上清,并使用新鲜完全培养基轻柔重悬L363细胞。
重悬后建议立即进行细胞计数和活率检测,根据细胞数量调整培养密度,再将L363细胞转入培养瓶中进行培养。复苏后的L363细胞可能出现短时间内活率下降、部分细胞死亡或增殖速度减慢等情况,一般需要给予一定恢复时间。复苏后24–72小时重点观察L363细胞的形态、活率和细胞数量变化,待细胞恢复稳定增殖后再进行正常传代。
三、L363细胞日常培养及传代
L363细胞为悬浮生长,因此日常传代时不需要使用胰酶或EDTA进行消化。传代前可轻轻吹打或摇匀培养瓶,使L363细胞均匀分散于培养液中,然后取适量细胞悬液进行计数。
当L363细胞处于良好生长状态并达到适宜密度后,根据细胞计数结果计算传代所需的细胞悬液体积。按照约1:2~1:3的比例,将L363细胞接种至含新鲜完全培养基的培养瓶中,并将最终细胞密度调整至约0.2–0.5×10⁶ cells/mL范围。
例如,L363细胞培养密度较高时,可取一定比例的原培养液直接转入新的培养瓶,再补充新鲜完全培养基,使细胞浓度恢复到适宜范围。具体传代比例应根据L363细胞当前的增殖速度、活率和培养密度进行调整。
培养过程中应每天观察L363细胞状态,包括细胞形态、聚集程度、培养基颜色、细胞密度以及是否存在污染迹象。正常情况下,L363细胞主要呈圆形或卵圆形悬浮于培养基中,也可能形成一定程度的细胞团。若出现大量细胞碎片、细胞明显变形、培养基快速变色或细胞增殖异常,应及时检查培养条件及污染情况。
需要注意的是,L363细胞虽然可以在较高密度下继续生长,但不建议长期维持过高细胞密度。过度汇合或长期高密度培养可能造成营养物质消耗和代谢产物积累,从而影响L363细胞的活率及后续实验稳定性。因此,建议在细胞处于良好对数生长期时及时传代。
四、L363细胞冻存
L363细胞冻存应选择生长状态良好、处于对数生长期且细胞活率较高的细胞。建议避免使用长期高密度培养、明显衰老或状态异常的L363细胞进行冻存。冻存前可进行细胞计数、活率检测及支原体检测,以确保建立的L363细胞冻存库具有良好的质量。
L363细胞推荐采用含DMSO的冻存液进行保存,常用配方为:70%培养基 + 20% FBS + 10% DMSO
收集L363细胞悬液后进行温和离心,弃去培养上清,再使用预先配制好的冻存液轻柔重悬细胞。DMSO加入后具有一定细胞毒性,因此L363细胞与冻存液混合后,应尽量缩短室温放置时间,并及时进行程序降温。
将L363细胞按照合适的细胞数量分装至冻存管中,做好细胞名称、批次、代次及冻存日期等标识。随后采用规范的程序降温方式进行预冻,再转移至液氮环境中长期保存。长期保存过程中应避免反复冻融,以减少L363细胞活率下降及细胞状态改变。
五、L363细胞培养注意事项
L363细胞培养过程中,最重要的控制因素是细胞密度和细胞生长状态。由于L363细胞属于悬浮细胞,因此不能按照贴壁细胞的培养方式进行操作,也不需要通过胰酶消化完成传代。
L363细胞复苏时应遵循快速解冻、及时稀释DMSO的原则;日常培养应避免长期高密度状态,并根据细胞实际增殖情况及时传代;L363细胞冻存则应选择状态良好的对数期细胞,并采用规范的程序降温及液氮保存方法。
在进行药物筛选、细胞增殖、凋亡、流式细胞术或其他功能实验时,建议使用处于稳定对数生长期的L363细胞,并尽量保持不同实验组之间一致的细胞传代状态和接种密度,以降低细胞状态差异对实验结果造成的影响。实际培养参数可根据细胞来源、培养基批次和实验室条件进行适当优化。
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| Amelogenin | X |
| CSF1PO | 10, 10 |
| D2S1338 | 18, 26 |
| D3S1358 | 15, 18 |
| D5S818 | 11, 12 |
| D7S820 | 9, 11 |
| D8S1179 | 12, 13 |
| D13S317 | 12, 12 |
| D16S539 | 10, 12 |
| D18S51 | 14, 14 |
| D19S433 | 14, 16 |
| D21S11 | 30, 32.2 |
| FGA | 19, 22 |
| Penta D | 9, 13 |
| Penta E | 13, 16 |
| TH01 | 6, 9.3 |
| TPOX | 8, 12 |
| vWA | 16, 19 |
参考文献
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